Venopunción

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Proceso de obtención de acceso intravenoso
Venipuntura
Video de una venipuntura

En medicina, la venopunción o venopunción es el proceso de obtención de un acceso intravenoso con el fin de obtener muestras de sangre venosa (también llamada flebotomía) o terapia intravenosa. En el cuidado de la salud, este procedimiento lo realizan científicos de laboratorio médico, médicos, algunos técnicos de emergencias médicas, paramédicos, flebotomistas, técnicos de diálisis y otro personal de enfermería. En medicina veterinaria, el procedimiento es realizado por veterinarios y técnicos veterinarios.

Es esencial seguir un procedimiento estándar para la recolección de muestras de sangre para obtener resultados de laboratorio precisos. Cualquier error en la extracción de sangre o en el llenado de los tubos de ensayo puede dar lugar a resultados de laboratorio erróneos.

La venopunción es uno de los procedimientos invasivos que se realizan con mayor frecuencia y se lleva a cabo por cualquiera de las siguientes cinco razones:

  1. para obtener sangre con fines diagnósticos;
  2. monitorear los niveles de los componentes sanguíneos;
  3. administrar tratamientos terapéuticos incluyendo medicamentos, nutrición o quimioterapia;
  4. eliminar la sangre debido al exceso de niveles de hierro o eritrocitos (célulos sanguíneos rojos); o
  5. para recoger sangre para usos posteriores, principalmente transfusión en el donante o en otra persona.

El análisis de sangre es una importante herramienta de diagnóstico disponible para los médicos dentro de la atención médica.

La sangre se obtiene con mayor frecuencia de las venas superficiales del miembro superior. La vena cubital mediana, que se encuentra dentro de la fosa cubital anterior al codo, está cerca de la superficie de la piel sin muchos nervios grandes ubicados cerca. Otras venas que se pueden utilizar en la fosa cubital para la venopunción incluyen las venas cefálica, basílica y antebraquial mediana.

Se pueden tomar muestras de sangre por punción en el dedo y recolectarlas de los bebés mediante un pinchazo en el talón o de las venas del cuero cabelludo con una aguja de infusión con alas.

La flebotomía (incisión en una vena) también es el tratamiento de ciertas enfermedades como la hemocromatosis y la policitemia primaria y secundaria.

Complicaciones

Un estudio de 1996 de donantes de sangre (se usa una aguja más grande en la donación de sangre que en la venopunción de rutina) encontró que 1 de cada 6300 donantes sufrió una lesión nerviosa.

Equipo

Hay muchas formas de extraer sangre de una vena y el método utilizado depende de la edad de la persona, el equipo disponible y el tipo de pruebas requeridas.

La mayoría de las extracciones de sangre en EE. UU., Reino Unido, Canadá y Hong Kong se realizan con un sistema de tubo de vacío. Dos sistemas comunes son Vacutainer (Becton, Dickinson y compañía) y Vacuette (Greiner Bio-One). El equipo consta de un adaptador de plástico, también conocido como tubo o portaagujas/hub, una aguja hipodérmica y un tubo de vacío. En determinadas circunstancias, se puede utilizar una jeringa, a menudo con una aguja de mariposa, que es un catéter de plástico unido a una aguja corta. En el mundo en desarrollo, el sistema de tubo de vacío es el método preferido para extraer sangre.

Con tubos de vacío o evacuados

Botellas de sangre de vacío

Greiner Bio-One fabricó el primer tubo de extracción de sangre al vacío de plástico en 1985 bajo la marca VACUETTE. Hoy en día, muchas empresas venden tubos de vacío ya que la patente de este dispositivo ahora es de dominio público. Estos tubos se fabrican con un volumen específico de gas extraído del tubo sellado. Cuando se inserta una aguja de un concentrador o dispositivo de transferencia en el tapón, el vacío del tubo extrae automáticamente el volumen de sangre requerido.

El sistema básico de tubos de vacío (ETS) consta de una aguja, un soporte para tubos y los tubos de vacío. El flebotomista sujeta la aguja al soporte del tubo antes de la recolección, o puede venir del fabricante como una sola unidad. La aguja sobresale por el extremo del soporte del tubo y tiene una aguja en cada extremo. Después de limpiar primero el sitio de la venopunción y aplicar un torniquete, el flebotomista destapa la aguja unida al soporte del tubo, inserta la aguja en la vena, luego desliza los tubos evacuados en el soporte del tubo, donde el tapón del tubo es perforado por el extremo posterior de la aguja. El vacío en el tubo extrae automáticamente la sangre necesaria directamente de la vena. Se pueden conectar y quitar múltiples tubos de vacío a la vez de una sola aguja, lo que permite obtener múltiples muestras de un solo procedimiento. Esto es posible gracias al manguito de muestra múltiple, que es un accesorio de goma flexible sobre el extremo posterior de la cánula de la aguja que sella la aguja hasta que se aparta. Esto evita que la sangre se drene libremente por la parte posterior de la aguja insertada en la vena, a medida que se extrae cada tubo de ensayo y se empala el siguiente. Las normas de seguridad de OSHA exigen que las agujas o los soportes para tubos vengan equipados con un dispositivo de seguridad para cubrir la aguja después del procedimiento y evitar lesiones accidentales por pinchazo de aguja.

También hay disponibles accesorios y adaptadores que se utilizan para llenar tubos de vacío de kits de agujas de mariposa y jeringas.

Hay varios calibres de aguja para que un flebotomista pueda elegir. Las más utilizadas son las siguientes: una aguja de 21 g (tapa verde), una aguja de 22 g (tapa negra), una aguja de mariposa de 21 g (etiqueta verde), una aguja de mariposa de 23 g (etiqueta azul claro) y una aguja de 25 g (naranja u oscuro). etiqueta azul) aguja de mariposa (sin embargo, esta aguja solo se usa en pediatría o en casos extremos, ya que es tan pequeña que a menudo puede provocar la hemolisis de la muestra de sangre). También hay una variedad de tamaños y volúmenes de tubos y botellas para diferentes requisitos de prueba.

Aditivos y orden de extracción

Los tubos de ensayo en los que se recolecta la sangre pueden contener uno o más de varios aditivos. En general, las pruebas que requieren sangre completa requieren muestras de sangre recolectadas en tubos de ensayo que contienen alguna forma de anticoagulante EDTA. El EDTA quela el calcio para evitar la coagulación. Se prefiere el EDTA para las pruebas de hematología porque causa un daño mínimo a la morfología celular. El citrato de sodio es el anticoagulante que se utiliza en las muestras recogidas para las pruebas de coagulación. La mayoría de las pruebas de química e inmunología se realizan en suero, que se produce coagulando y luego separando la muestra de sangre mediante centrifugación. Estas muestras se recogen en un tubo sin aditivos o en uno que contiene un activador de la coagulación. Este activador de la coagulación puede interferir con algunos ensayos, por lo que en estos casos se recomienda un tubo simple, pero retrasará la prueba. Los tubos que contienen heparina de litio o heparina de sodio también se usan comúnmente para una variedad de pruebas químicas, ya que no requieren coagulación y se pueden centrifugar inmediatamente después de la recolección. Se usa una combinación de fluoruro de sodio y oxalato de potasio para las pruebas de glucosa, ya que estos aditivos previenen la coagulación y detienen la glucolosis, de modo que los niveles de glucosa en sangre se conservan después de la recolección. Otro tubo especial es un tubo de color ámbar opaco que se usa para recolectar sangre para analitos sensibles a la luz, como la bilirrubina.

Los tubos de ensayo están etiquetados con el aditivo que contienen, pero el tapón de cada tubo también tiene un código de color según el aditivo. Si bien los colores varían entre los fabricantes, los colores de los tapones generalmente se asocian con cada aditivo, como se indica a continuación. Debido a que los aditivos de cada tubo se pueden dejar en la aguja utilizada para llenar los tubos, deben extraerse en un orden específico para garantizar que la contaminación cruzada no afecte negativamente a las pruebas de las muestras si se extraen varios tubos a la vez. El "orden de sorteo" varía según el método de recolección. A continuación, en el orden de extracción generalmente requerido para el método de recolección del sistema de tubos evacuados (ETS), se encuentran los tubos más comunes, enumerando el aditivo y el color:

Tipos de tubo de vacío/sample para ventilación/frabotomía edición
Tubo de color o tipo en orden de dibujoAditivoUso y comentarios
Cultura sanguínea botellaSodium polyanethol sulfonate (anticoagulante) y crecimiento de los medios de comunicación para microorganismosPor lo general dibujado primero para un riesgo mínimo de contaminación. Dos botellas se recogen típicamente en un dibujo sanguíneo; una para organismos aeróbicos y otra para organismos anaeróbicos.
Azul claro Citrato de sodio (ganador de calcio débil/anticoagulante)Pruebas de coagulación como el tiempo protrombino (PT) y el tiempo parcial de tromboplastina (PTT) y el tiempo trombino (TT). El tubo debe llenarse 100%.
Rojo azul No hay aditivoSuero: Total complemento de actividad, crioglobulinas
Oro (a veces rojo y gris "tiger top") Activador de cierre y suero separando gelTubo separador de suero: Las inversiones de tubo promueven la coagulación. La mayoría de pruebas de química, endocrina y serología, incluyendo hepatitis y VIH.
Verde oscuro Sodium heparina (anticoagulante)Chromosome testing, HLA typing, ammonia, lactate
Verde luz Litio heparina (anticoagulante)Plasma. Las inversiones de tubo evitan la coagulación
Lavender ("purple") EDTA (chelator / anticoagulant)Sangre entera: CBC, ESR, test de Coombs, anticuerpos de plaquetas, citometría de flujo, niveles de sangre de tacrolimus y ciclosporina
Rosa EDTA (chelator / anticoagulant)Sangre escribiendo prueba de Coombs directa, carga viral del VIH
Azul real EDTA (chelator / anticoagulant)Trace elements, heavy metals, most drug levels, toxicology
Tan EDTA (chelator / anticoagulant)Lead
Gray
  • Fluoruro de sodio (inhibidor de glucolisis)
  • Potasio oxalato (anticoagulante)
Glucose, lactate
Amarillo Acid-citrate-dextrose A (anticoagulante)Tissue typing, DNA studies, HIV cultures
Perla ("blanca") gel separador y (K2)EDTAPCR para adenovirus, toxoplasma y HHV-6

En niños

El uso de la iontoforesis con lidocaína es eficaz para reducir el dolor y aliviar la angustia durante la venopunción en niños. Se ha demostrado que un sistema de administración de lidocaína en polvo sin aguja reduce el dolor de la venopunción en los niños. La anestesia dérmica rápida se puede lograr mediante la infiltración de anestésico local, pero puede provocar ansiedad en los niños asustados por las agujas o distorsionar la piel, lo que dificulta el acceso vascular y aumenta el riesgo de exposición de las agujas a los trabajadores de la salud. La anestesia dérmica también se puede lograr sin agujas mediante la aplicación tópica de anestésicos locales o mediante iontoforesis con lidocaína. Por el contrario, la anestesia dérmica no invasiva se puede establecer en 5 a 15 minutos sin distorsionar los tejidos subyacentes mediante iontoforesis con lidocaína, donde una corriente eléctrica directa facilita la penetración dérmica de moléculas de lidocaína cargadas positivamente cuando se colocan debajo del electrodo positivo.

Un estudio concluyó que la administración iontoforética de lidocaína era segura y eficaz para proporcionar anestesia dérmica para la venopunción en niños de 6 a 17 años. Esta técnica puede no ser aplicable a todos los niños. Los estudios futuros pueden proporcionar información sobre la dosis iontoforética mínima efectiva para la anestesia dérmica en niños y la comparación de la eficacia anestésica y la satisfacción de la iontoforesis con lidocaína con cremas anestésicas tópicas e infiltración subcutánea.

Los tratamientos no farmacológicos para el dolor asociado con la venopunción en niños incluyen hipnosis y distracción. Estos tratamientos redujeron el dolor autoinformado y, cuando se combinaron con la terapia cognitivo-conductual (TCC), la reducción del dolor fue aún mayor. No se encontró que otras intervenciones fueran efectivas y estas son la sugerencia, soplar aire y la distracción con el entrenamiento de los padres que no difirieron del control del dolor y la angustia.

Con aguja y jeringa

Algunos trabajadores de la salud prefieren usar una técnica de jeringa y aguja para la venopunción. Sarstedt fabrica un sistema de extracción de sangre (S-Monovette) que utiliza este principio. Este método se puede preferir en personas mayores, personas con cáncer, quemaduras graves, obesidad o donde las venas no son confiables o son frágiles. Debido a que las jeringas se accionan manualmente, la cantidad de succión aplicada se puede controlar fácilmente. Esto es particularmente útil cuando las venas son pequeñas y pueden colapsar bajo la succión de un tubo de vacío. En niños u otras circunstancias en las que la cantidad de sangre obtenida puede ser limitada, puede ser útil saber cuánta sangre se puede obtener antes de distribuirla entre los diversos aditivos que requerirá el laboratorio. Otra alternativa es extraer sangre de cánulas permanentes.

Cultivos de sangre

Hay ocasiones en las que se requiere una extracción de hemocultivo. El cultivo determinará si hay patógenos en la sangre. Normalmente la sangre es estéril. Cuando extraiga sangre de cultivos, use una solución estéril como Betadine en lugar de alcohol. Esto se hace usando guantes estériles, sin limpiar la solución quirúrgica, tocar el sitio de punción o comprometer de alguna manera el proceso estéril. Es vital que el procedimiento se realice de la manera más estéril posible, ya que la presencia persistente de comensales de la piel en los hemocultivos podría indicar endocarditis, pero se encuentran con mayor frecuencia como contaminantes. Se recomienda utilizar un método abrasivo de preparación de la piel. Esto elimina las capas superiores de células muertas de la piel junto con sus bacterias contaminantes. Tradicionalmente se ha utilizado povidona yodada, pero en el Reino Unido se prefiere una solución de clorhexidina al 2 % en etanol al 70 % o alcohol isopropílico y se debe dejar que se seque. La parte superior de los recipientes utilizados para extraer un cultivo de sangre también debe desinfectarse con una solución similar. Algunos laboratorios desalientan activamente el uso de yodo cuando se piensa que el yodo degrada el tapón de goma a través del cual la sangre ingresa a la botella, lo que permite que los contaminantes ingresen al recipiente.

La sangre se recolecta en botellas de transporte especiales, que son como tubos de vacío pero con formas diferentes. El frasco de hemocultivo contiene medios de transporte para preservar los microorganismos presentes mientras se transportan al laboratorio para cultivos. Debido a que se desconoce si los patógenos son anaeróbicos (viven sin oxígeno) o aeróbicos (viven con oxígeno), se recolecta sangre para analizar ambos. Primero se llena la botella aeróbica y luego se llena la botella anaeróbica. Sin embargo, si la recolección se realiza con una jeringa, primero se llena la botella anaeróbica. Si se usa un kit de recolección de mariposas, primero se llena la botella aeróbica, de modo que el aire del tubo se libere en la botella que contiene oxígeno.

Los frascos de recolección de hemocultivos especialmente diseñados eliminan la necesidad del método de recolección con jeringa o mariposa. Estas botellas especialmente diseñadas tienen cuellos largos que encajan en los soportes para tubos de vacío que se usan para la recolección regular de venopunción. Estos frascos también permiten la recolección de otras muestras de sangre a través de tubos de vacío, para su recolección sin venopunción adicional.

La cantidad de sangre que se recolecta es crítica para la recuperación óptima de los microorganismos. Lo típico es hasta 10 ml de sangre, pero puede variar según las recomendaciones del fabricante de la botella de recolección. La recolección de bebés y niños es de 1 a 5 ml. Si se recolecta muy poca sangre, la proporción de sangre a caldo nutritivo inhibirá el crecimiento de microorganismos. Si se recolecta demasiada sangre, existe el riesgo de una anemia inducida en el hospital y la proporción de caldo de sangre a nutrientes se inclinará en la dirección opuesta, lo que tampoco conduce a un crecimiento óptimo.

Luego, las botellas se incuban en unidades especializadas durante 24 horas antes de que un técnico de laboratorio las estudie o las pruebe. Este paso permite que cantidades muy pequeñas de bacterias (potencialmente 1 o 2 organismos) se multipliquen a un nivel que sea suficiente para la identificación +/- prueba de resistencia a los antibióticos. Los frascos de hemocultivo modernos tienen un indicador en la base que cambia de color en presencia de crecimiento bacteriano y puede ser leído automáticamente por una máquina. (Por esta razón, las etiquetas adhesivas con códigos de barras que se encuentran en estas botellas no deben quitarse, ya que son utilizadas por los sistemas automatizados del laboratorio).

Toma de muestras de sangre de animales

Las muestras de sangre de animales de laboratorio vivos se pueden recolectar utilizando los siguientes métodos:

  • La recolección de sangre no requiere anestesia:
    • Vena Saphenous (rata, ratones, cobaya)
    • Vena de pedal Dorsal (rata, ratones)
  • Recogida de sangre que requiere anestesia (anestesia local/general):
    • Vena de cola (rat, ratones)
    • Tail snip (mice)
    • Sino orbital (rata, ratones)
    • Vena jugular (rata, ratones)
    • Cánula temporal (rat, ratones)
    • Canulación de vasos sanguíneos (conejillo de guinea, hurón)
    • Vena Tarsal (conejillo de guinea)
    • Vena o arteria del oído marginal (rabbit)
  • Procedimiento terminal:
    • punción cardiaca (rat, ratones, conejillo de guinea, conejo, huret)
    • Sino orbital (rata, ratones)
    • Vena cava posterior (rata, ratones)

El volumen de recogida de muestras de sangre es muy importante en animales de experimentación. Toda extracción de sangre no terminal sin reposición de líquidos está limitada hasta el 10 % del volumen total de sangre circulante en animales adultos sanos y normales en una sola ocasión y la extracción puede repetirse después de tres o cuatro semanas. En caso de que se requieran muestras de sangre repetidas a intervalos cortos, se puede extraer un máximo de 0,6 ml/kg/día o el 1,0 % del volumen total de sangre de un animal cada 24 horas. El volumen de sangre estimado en animales adultos es de 55 a 70 ml/kg de peso corporal. Se debe tener cuidado con los animales mayores y obesos. Si el volumen de extracción de sangre excede más del 10 % del volumen total de sangre, es posible que se requiera reposición de líquidos. Los Institutos Nacionales de Salud (NIH) recomiendan la solución de Lactato de Ringer (LRS) como el mejor reemplazo de líquidos. Si el volumen de recolección de sangre excede más del 30% del volumen total de sangre circulatoria, se debe tener el cuidado adecuado para que el animal no desarrolle hipovolemia.

Pruebas de alcohol en sangre

Por lo general, no se recomienda usar alcohol isopropílico para limpiar el sitio de la venopunción cuando se obtiene una muestra para una prueba de alcohol en sangre. Esto se ha relacionado en gran medida con las posibles implicaciones legales asociadas con el uso de limpiadores a base de alcohol que teóricamente podrían afectar el análisis. Se han comercializado numerosos kits policiales de recolección de alcohol que incorporan un conservante de fluoruro de sodio/oxalato de potasio y agentes de limpieza sin alcohol para garantizar una recolección adecuada. El uso de jabón y agua caliente o un hisopo con povidona yodada son alternativas recomendables al alcohol isopropílico en este caso.

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