Termoestabilidad

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Estructura de cristal de β-glucosidase de Thermotoga neapolitana (PDB: 5IDI). Proteína termostable, activa a 80°C y con temperatura de desarrollo de 101°C.

En la ciencia de los materiales y la biología molecular, la termoestabilidad es la capacidad de una sustancia de resistir cambios irreversibles en su estructura química o física, a menudo resistiendo la descomposición o la polimerización, a una temperatura relativa alta.

Los materiales termoestables pueden utilizarse industrialmente como retardantes del fuego. Un plástico termoestable, un término poco común y poco convencional, es más probable que se refiera a un plástico termoendurecible que no puede volver a formarse cuando se calienta, que a un termoplástico que puede volver a fundirse y moldearse.

La termoestabilidad también es una propiedad de algunas proteínas. Ser una proteína termoestable significa ser resistente a los cambios en la estructura de la proteína debido al calor aplicado.

Proteínas termoestables

A medida que se añade calor, esto interrumpe los lazos intramoleculares encontrados en la estructura terciaria de proteínas, causando que la proteína se despliegue y se vuelva inactiva.

La mayoría de las formas de vida en la Tierra viven a temperaturas inferiores a 50 °C, normalmente entre 15 y 50 °C. En el interior de estos organismos hay macromoléculas (proteínas y ácidos nucleicos) que forman las estructuras tridimensionales esenciales para su actividad enzimática. Por encima de la temperatura nativa del organismo, la energía térmica puede provocar el desdoblamiento y la desnaturalización, ya que el calor puede alterar los enlaces intramoleculares en la estructura terciaria y cuaternaria. Este desdoblamiento dará lugar a la pérdida de la actividad enzimática, lo que es comprensiblemente perjudicial para la continuidad de las funciones vitales. Un ejemplo de ello es la desnaturalización de las proteínas de la albúmina, que pasan de ser un líquido transparente y casi incoloro a un gel blanco opaco e insoluble.

Las proteínas capaces de soportar temperaturas tan altas en comparación con las proteínas que no pueden, generalmente provienen de microorganismos que son hipertermófilos. Estos organismos pueden soportar temperaturas superiores a 50 °C, ya que suelen vivir en entornos de 85 °C y superiores. Existen ciertas formas de vida termófilas que pueden soportar temperaturas superiores a esta y tienen adaptaciones correspondientes para preservar la función de las proteínas a estas temperaturas. Estas pueden incluir propiedades generales alteradas de la célula para estabilizar todas las proteínas y cambios específicos en proteínas individuales. La comparación de proteínas homólogas presentes en estos termófilos y otros organismos revela algunas diferencias en la estructura de las proteínas. Una diferencia notable es la presencia de enlaces de hidrógeno adicionales en las proteínas de los termófilos, lo que significa que la estructura de la proteína es más resistente al desdoblamiento. De manera similar, las proteínas termoestables son ricas en puentes salinos o puentes disulfuro adicionales que estabilizan la estructura. Otros factores de la termoestabilidad de las proteínas son la compacidad de la estructura de la proteína, la oligomerización y la interacción de fuerza entre subunidades.

Usos y aplicaciones

Reacciones de la cadena de polimerasa

Las ADN polimerasas termoestables, como la Taq polimerasa y la Pfu, se utilizan en las reacciones en cadena de la polimerasa (PCR), en las que se utilizan temperaturas de 94 °C o más para fundir las cadenas de ADN en el paso de desnaturalización de la PCR. Esta resistencia a las altas temperaturas permite que la ADN polimerasa alargue el ADN con una secuencia de interés deseada con la presencia de dNTP.

Aditivos alimentados

Con frecuencia se añaden enzimas a los piensos para mejorar la salud y el crecimiento de los animales de granja, en particular de los pollos y los cerdos. Normalmente, el pienso se trata con vapor a alta presión para matar bacterias como la salmonela. Por lo tanto, las enzimas añadidas (por ejemplo, la fitasa y la xilanasa) deben poder soportar este desafío térmico sin inactivarse de forma irreversible.

Purificación de proteínas

El conocimiento de la resistencia de una enzima a altas temperaturas es especialmente beneficioso en la purificación de proteínas. En el procedimiento de desnaturalización por calor, se puede someter una mezcla de proteínas a altas temperaturas, lo que dará como resultado la desnaturalización de proteínas que no son termoestables y el aislamiento de la proteína que es termodinámicamente estable. Un ejemplo notable de esto se encuentra en la purificación de la fosfatasa alcalina del hipertermófilo Pyrococcus abyssi. Esta enzima es conocida por ser termoestable a temperaturas superiores a 95 °C y, por lo tanto, se puede purificar parcialmente mediante calentamiento cuando se expresa heterólogamente en E. coli. El aumento de temperatura hace que las proteínas de E. coli precipiten, mientras que la fosfatasa alcalina de P. abyssi permanece estable en solución.

Glycoside hydrolases

Otro grupo importante de enzimas termoestables son las glicósido hidrolasas. Estas enzimas son responsables de la degradación de la fracción mayoritaria de la biomasa, los polisacáridos presentes en el almidón y la lignocelulosa. Por ello, las glicósido hidrolasas están ganando un gran interés en aplicaciones de biorrefinación en la bioeconomía del futuro. Algunos ejemplos son la producción de monosacáridos para aplicaciones alimentarias, así como su uso como fuente de carbono para la conversión microbiana en combustibles (etanol) e intermediarios químicos, la producción de oligosacáridos para aplicaciones prebióticas y la producción de surfactantes de tipo alquilglicósido. Todos estos procesos a menudo implican tratamientos térmicos para facilitar la hidrólisis de los polisacáridos, por lo que las variantes termoestables de las glicósido hidrolasas tienen un papel importante en este contexto.

Enfoques para mejorar la termoestabilidad de las proteínas

La ingeniería de proteínas se puede utilizar para mejorar la termoestabilidad de las proteínas. Se han utilizado varias técnicas de mutagénesis dirigida y aleatoria, además de la evolución dirigida, para aumentar la termoestabilidad de las proteínas objetivo. Se han utilizado métodos comparativos para aumentar la estabilidad de las proteínas mesófilas basándose en la comparación con homólogos termófilos. Además, el análisis del desdoblamiento de las proteínas mediante dinámica molecular se puede utilizar para comprender el proceso de desdoblamiento y luego diseñar mutaciones estabilizadoras. La ingeniería de proteínas racional para aumentar la termoestabilidad de las proteínas incluye mutaciones que truncan bucles, aumentan los puentes salinos o los enlaces de hidrógeno y los enlaces disulfuro introducidos. Además, la unión de ligandos puede aumentar la estabilidad de la proteína, en particular cuando se purifica. Existen varias fuerzas diferentes que permiten la termoestabilidad de una proteína en particular. Estas fuerzas incluyen interacciones hidrofóbicas, interacciones electrostáticas y la presencia de enlaces disulfuro. La cantidad total de hidrofobicidad presente en una proteína en particular es responsable de su termoestabilidad. Otro tipo de fuerza responsable de la termoestabilidad de una proteína son las interacciones electrostáticas entre moléculas. Estas interacciones incluyen puentes salinos y enlaces de hidrógeno. Los puentes salinos no se ven afectados por las altas temperaturas, por lo tanto, son necesarios para la estabilidad de las proteínas y las enzimas. Una tercera fuerza utilizada para aumentar la termoestabilidad en proteínas y enzimas es la presencia de enlaces disulfuro. Presentan enlaces cruzados covalentes entre las cadenas polipeptídicas. Estos enlaces son los más fuertes porque son enlaces covalentes, lo que los hace más fuertes que las fuerzas intermoleculares. La glicosilación es otra forma de mejorar la termoestabilidad de las proteínas. Los efectos estereoelectrónicos en las interacciones estabilizadoras entre carbohidratos y proteínas pueden conducir a la termoestabilización de la proteína glicosilada. La ciclización de enzimas mediante la unión covalente del extremo N al extremo C se ha aplicado para aumentar la termoestabilidad de muchas enzimas. La ciclización de inteínas y la ciclización SpyTag/SpyCatcher se han empleado a menudo.

Toxinas térmicas

Ciertos hongos venenosos contienen toxinas termoestables, como la amatoxina presente en los hongos de la muerte y la escutelaria otoñal y la patulina de los mohos. Por lo tanto, la aplicación de calor a estos hongos no eliminará la toxicidad y es de especial importancia para la seguridad alimentaria.

Véase también

Termófilos
  • Thermus thermophilus
  • Thermus aquaticus
  • Pyrococcus furiosus

Referencias

  1. ^ Kulkarni TS, Khan S, Villagomez R, Mahmood T, Lindahl S, Logan DT, et al. (mayo de 2017). "Crystal structure of β-glucosidase 1A from Thermotoga neapolitana and comparison of active site mutants for hydrolysis of flavonoid glucosides". Proteínas. 85 (5): 872-884. doi:10.1002/prot.25256. PMID 28142197. S2CID 27832389.
  2. ^ Kandhari N, Sinha S (26 de junio de 2017). "Análisis de red complejo de mutantes termoestables de Bacillus subtilis Lipase A". Applied Network Science. 2 (1): 18. doi:10.1007/s41109-017-0039-y. PMC 6214246. PMID 30443573.
  3. ^ Danson MJ, Hough DW, Russell RJ, Taylor GL, Pearl L (agosto de 1996). "Enzyme thermostability and thermoactividad". Ingeniería de proteínas. 9 (8): 629-630. doi:10.1093/proteína/9.8.629. PMID 8875639.
  4. ^ Takami H, Takaki Y, Chee GJ, Nishi S, Shimamura S, Suzuki H, et al. (2004). "El rasgo de la termadaptación revelado por la secuencia genoma del geobacilo termofílico kaustophilus". Nucleic Acids Research. 32 (21): 6292–6303. doi:10.1093/nar/gkh970. PMC 535678. PMID 15576355.
  5. ^ Neves C, da Costa MS, Santos H (diciembre de 2005). "Solutos compatibles del hipertermofilo Palaeococcus ferrophilus: osmoadaptación y termoadaptación en el orden termocales". Microbiología aplicada y ambiental. 71 (12): 8091–8098. Código: 2005 ApEnM.71.8091N. doi:10.1128/AEM.71.12.8091-8098.2005. PMC 1317470. PMID 16332790.
  6. ^ Das R, Gerstein M (mayo de 2000). "La estabilidad de las proteínas termofílicas: un estudio basado en la comparación integral del genoma". Funcionalidad e integración Genómica. 1 (1): 76–88. doi:10.1007/s101420000003. PMID 11793224. S2CID 2717885.
  7. ^ Matsumura M, Becktel WJ, Levitt M, Matthews BW (septiembre 1989). "Stabilization of phage T4 lysozyme by engineered disulfide bonds". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América. 86 (17): 6562–6566. Código:1989PNAS...86.6562M. doi:10.1073/pnas.86.17.6562. PMC 297884. PMID 2671995.
  8. ^ Thompson MJ, Eisenberg D (julio de 1999). "Evidencia transproteomica de un mecanismo de eliminación de bucles para mejorar la termostabilidad de proteínas". Journal of Molecular Biology. 290 (2): 595–604. doi:10.1006/jmbi.1999.2889. PMID 10390356.
  9. ^ Tanaka Y, Tsumoto K, Yasutake Y, Umetsu M, Yao M, Fukada H, et al. (Julio de 2004). "Cómo la oligomerización contribuye a la termostabilidad de una proteína arqueónica. Protein L-isoaspartyl-O-methyltransferase de Sulfolobus tokodaii". El Diario de Química Biológica. 279 (31): 32957-32967. doi:10.1074/jbc.M404405200. PMID 15169774.
  10. ^ Saiki RK, Gelfand DH, Stoffel S, Scharf SJ, Higuchi R, Horn GT, et al. (enero de 1988). "Amplificación enzimática dirigida por primitivo del ADN con una polimerasa de ADN termostable". Ciencia. 239 (4839): 487–491. código:1988Sci...239..487S. doi:10.1126/science.239.4839.487. PMID 2448875.
  11. ^ Corrêa TL, de Araújo EF (septiembre 2020). "Fitas pulmonares: de genes a aplicaciones". Brazilian Journal of Microbiology. 51 (3): 1009-1020. doi:10.1007/s42770-020-00289-y. PMC 7455620. PMID 32410091.
  12. ^ Zappa S, Rolland JL, Flament D, Gueguen Y, Boudrant J, Dietrich J (octubre de 2001). "Caracterización de una fosfatasa alcalina altamente termostable del euryarchaeon Pyrococcus abyssi". Microbiología aplicada y ambiental. 67 (10): 4504–4511. Código de la Biblia:2001ApEnM..67.4504Z. doi:10.1128/AEM.67.10.4504-4511.2001. PMC 93196. PMID 11571149.
  13. ^ Linares-Pasten JA, Andersson M, N Karlsson E (2014). "Las hidrolasas glicóseas térmicas en tecnologías de biorefinería". Biotecnología actual. 3 (1): 26–44. doi:10.2174/22115501113026660041.
  14. ^ Sarkar CA, Dodevski I, Kenig M, Dudli S, Mohr A, Hermans E, Plückthun A (septiembre de 2008). "Evolución reconocida de un receptor de proteína G para la expresión, estabilidad y selectividad vinculante". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América. 105 (39): 14808-14813. Código:2008PNAS..10514808S. doi:10.1073/pnas.0803103105. PMC 2567449. PMID 18812512.
  15. ^ Asial I, Cheng YX, Engman H, Dollhopf M, Wu B, Nordlund P, Cornvik T (2013). "Engineering protein thermostability utilizando una pantalla biofísica independiente de actividad genérica dentro de la célula". Nature Communications. 4: 2901. Bibcode:2013NatCo...4.2901A. doi:10.1038/ncomms3901. PMID 24352381.
  16. ^ Hoseki J, Yano T, Koyama Y, Kuramitsu S, Kagamiyama H (noviembre de 1999). "Evolución destacada del gen de resistencia termomicina: un conveniente marcador de selección para termófilo de Thermus". Journal of Biochemistry. 126 (5): 951–956. doi:10.1093/oxfordjournals.jbchem.a022539. PMID 10544290.
  17. ^ Sayed A, Ghazy MA, Ferreira AJ, Setubal JC, Chambergo FS, Ouf A, et al. (enero de 2014). "Una nueva reductasa mercúica del entorno único y profundo de la Atlántida II en el Mar Rojo". El Diario de Química Biológica. 289 (3): 1675-1687. doi:10.1074/jbc.M113.493429. PMC 3894346. PMID 24280218.
  18. ^ Perl D, Mueller U, Heinemann U, Schmid FX (mayo de 2000). "Dos residuos de aminoácidos expuestos confieren la termostabilidad a una proteína de choque fría". Naturaleza Biología estructural. 7 (5): 380–383. doi:10.1038/75151. PMID 10802734. S2CID 21850845.
  19. ^ Lehmann M, Pasamontes L, Lassen SF, Wyss M (diciembre de 2000). "El concepto de consenso para la ingeniería de termostabilidad de las proteínas". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Estructura de proteínas y enzimología molecular. 1543 (2): 408-415. doi:10.1016/s0167-4838(00)00238-7. PMID 11150616.
  20. ^ Sauer DB, Karpowich NK, Song JM, Wang DN (octubre de 2015). "Rapid Bioinformatic Identification of Thermostabilizing Mutations". Biophysical Journal. 109 (7): 1420-1428. Código: 2015 BpJ...109.1420S. doi:10.1016/j.bpj.2015.07.026. PMC 4601007. PMID 26445442.
  21. ^ Liu HL, Wang WC (enero de 2003). "Ingeniería de proteínas para mejorar la termosibilidad de la glucoamilasa de Aspergillus awamori basada en simulaciones de dinámica molecular". Ingeniería de proteínas. 16 (1): 19–25. doi:10.1093/proeng/gzg007. PMID 12646689.
  22. ^ Lee CW, Wang HJ, Hwang JK, Tseng CP (2014). "Proteína mejora la estabilidad térmica diseñando puentes de sal: un estudio combinado computacional y experimental". PLOS ONE. 9 (11): e112751. Bibcode:2014PLoSO...9k2751L. doi:10.1371/journal.pone.0112751. PMC 4231051. PMID 25393107.
  23. ^ Mansfeld J, Vriend G, Dijkstra BW, Veltman OR, Van den Burg B, Venema G, et al. (abril de 1997). "Extrema estabilización de una proteasa termosin-como por un vínculo disulfuro diseñado". El Diario de Química Biológica. 272 (17): 11152–11156. doi:10.1074/jbc.272.17.11152. PMID 9111013.
  24. ^ Mancusso R, Karpowich NK, Czyzewski BK, Wang DN (diciembre de 2011). "Metodo de detección simple para mejorar la termostabilidad de la proteína de la membrana". Métodos. 55 (4): 324–329. doi:10.1016/j.ymeth.2011.07.008. PMC 3220791. PMID 21840396.
  25. ^ Tigerström A (2005). "Thermostability of Proteins". BIOS. 76 (1): 22–27. doi:10.1893/0005-3155(2005)076[0022:TBFTOP]2.0.CO;2. JSTOR 4608725. S2CID 85654007.
  26. ^ Ardejani MS, Noodleman L, Powers ET, Kelly JW (mayo 2021). "Efectos estereoelectrónicos en la estabilización de las interacciones protein-N-glycan reveladas por experimento y aprendizaje automático". Química Naturaleza. 13 (5): 480-487. Código de la Biblia:2021NatCh..13..480A. doi:10.1038/s41557-021-00646-w. PMC 8102341. PMID 33723379.
  27. ^ Iwai H, Plückthun A (octubre de 1999). "Circular beta-lactamase: mejora de la estabilidad ciclándose la columna vertebral". Cartas FEBS. 459 (2): 166-172. doi:10.1016/s0014-5793(99)01220-xPMID 10518012. S2CID 85415249.
  28. ^ Keeble AH, Howarth M (Julio 2020). "Power to the protein: enhancing and combination activities using the Spy toolbox". Chemical Science. 11 (28): 7281–7291. doi:10.1039/d0sc01878c. PMC 7844731. PMID 33552459.
  29. ^ Aleccia JN (4 de noviembre de 2011). "FDA: Moldy applesauce reempaquetado por proveedor de almuerzo escolar". NBC Noticias. Retrieved 15 de abril 2015.
  • Thermostability of Proteins Archived 2016-06-22 en la máquina Wayback
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