Resistencia al ácido

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Propiedad física de ciertas células bacterianas y eucariotas
Mycobacterium tuberculosis (rojo manchado) en tejido (azul).

La resistencia al ácido es una propiedad física de ciertas células bacterianas y eucariotas, así como de algunas estructuras subcelulares, específicamente su resistencia a la decoloración por ácidos durante los procedimientos de tinción de laboratorio. Una vez teñidos como parte de una muestra, estos organismos pueden resistir los procedimientos de decoloración a base de ácido y/o etanol comunes en muchos protocolos de tinción, de ahí el nombre ácido resistente.

Los mecanismos de la acidez varían según la especie, aunque el ejemplo más conocido se encuentra en el género Mycobacterium, que incluye las especies responsables de la tuberculosis y la lepra. La resistencia al ácido de las Mycobacteria se debe al alto contenido de ácido micólico de sus paredes celulares, que es responsable del patrón de tinción de mala absorción seguida de una alta retención. Algunas bacterias también pueden ser parcialmente acidorresistentes, como la Nocardia.

Los organismos ácido-alcohol resistentes son difíciles de caracterizar usando técnicas microbiológicas estándar, aunque se pueden teñir usando tintes concentrados, particularmente cuando el proceso de tinción se combina con calor. Algunas, como las micobacterias, pueden teñirse con la tinción de Gram, pero no captan bien el cristal violeta y, por lo tanto, aparecen de color violeta claro, lo que aún puede dar lugar a una identificación incorrecta de los gramnegativos.

La técnica de tinción más común utilizada para identificar bacterias acidorresistentes es la tinción de Ziehl-Neelsen, en la que las especies acidorresistentes se tiñen de color rojo brillante y se destacan claramente sobre un fondo azul. Otro método es el método Kinyoun, en el que las bacterias se tiñen de rojo brillante y se destacan claramente sobre un fondo verde. Las micobacterias acidorresistentes también se pueden visualizar mediante microscopía de fluorescencia utilizando colorantes fluorescentes específicos (tinción de auramina-rodamina, por ejemplo). Los huevos del parásito pulmonar Paragonimus westermani en realidad son destruidos por la tinción, lo que puede dificultar el diagnóstico en pacientes que presentan síntomas similares a los de la tuberculosis.

Algunas técnicas de manchado ácido-rápido

  • Tintura de Ziehl-Neelsen (tipos de lejía clásico y modificado)
  • Kinyoun mancha
  • Para las personas ciegas de color (o en los fondos donde la detección de bacterias rojas es difícil), el azul de Victoria puede sustituirse por el fuchsin de carbol y el ácido picric se puede utilizar como la mancha de contador en lugar de azul de metileno, y el resto de la técnica de Kinyoun se puede utilizar.
    • Diversas técnicas de tinción de esporas bacterianas usando Kenyon, por ejemplo.
      • Método de Moeller
      • Método de Dorner (descolorante de alcohol ácido) sin la modificación Schaeffer-Fulton (decolorar por agua)
      • Método detergente, utilizando Tergitol 7, poliglicol noniónico ether surfactantes tipo NP-7
  • Fite mancha
    • Mancha Fite-Faraco
    • Wade Fite mancha
  • Ellis y Zabrowarny mancha (sin fenol/ácido carbólico)
  • Mancha de auramina-rhodamina
  • Mancha de fenol de auramina

Estructuras ácido-alcohol resistentes

Muy pocas estructuras son resistentes al ácido; esto hace que la tinción para determinar la resistencia al ácido sea particularmente útil en el diagnóstico. Los siguientes son ejemplos notables de estructuras que son resistentes al ácido o resistentes al ácido modificadas:

  • Todas las micobacterias – M. tuberculosis, M. leprae, M. smegmatis y atípico Mycobacterium
  • Actinomycetes (especialmente algunos aeróbic) con ácido micolico en su pared celular (nota Streptomyces no tiene); no ser confundido con Actinomyces, que es un género no ácido-rápido de actinomycete
    • Nocardia (debilidad ácido-rápido; resiste la decoloración con concentraciones de ácido más débiles)
    • Rhodococcus
    • Gordonia (un actinomycete)
    • Tsukamurella
    • Dietzia
  • Cabeza de esperma
  • Esporas bacterianas, ver Endospore
  • Legionella micdadei
  • Ciertas inclusiones celulares, por ejemplo.
    • Cuerpos de inclusión citoplasmática vistos en
      • Neuronas en la capa 5 de la lipofuscinosis neuronal córtex cerebral (enfermedad básica).
    • Órganos de inclusión nuclear
      • Intoxicación por plomo
      • Intoxicación con bismuto.
  • Oocitos de algunos parásitos coccidianos en materia faecal, tales como:
    • Cryptosporidium parvum,
    • Isospora belli
    • Cyclospora cayetanensis.
  • Otros parásitos:
    • Sarcocystis
    • Taenia saginata Huevos manchan bien pero Taenia solium los huevos no (se puede utilizar para distinguir)
    • quistes Hydatid, especialmente sus "putas" mancha irregularmente con la mancha ZN pero emana fluorescencia roja brillante bajo luz verde, y puede ayudar a la detección en fondos moderadamente pesados o con pocas ganchos.
  • Las formas de levadura fúngicas se manchan incoherentemente con la mancha Acid-fast que se considera una mancha estrecha de espectro para hongos. En un estudio sobre la acidez de hongos, el 60% de los blastomios y el 47% de la histoplasma mostraron manchas citoplasmáticas positivas de las células similares a la levadura, y Cryptococcus o cándida no mancharon, y se observó manchas muy raras en Coccidioides endospores.
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