Meiobentos

Meiobenthos, también llamado meiofauna, son pequeños invertebrados bentónicos que viven en ambientes marinos, de agua dulce o ambos. El término meiofauna define vagamente un grupo de organismos por su tamaño (más grande que la microfauna pero más pequeño que la macrofauna) en lugar de por su taxonomía. En la práctica, el término generalmente incluye organismos que pueden pasar a través de una malla de 1 mm pero que son retenidos por una malla de 45 μm, aunque las dimensiones exactas varían de un investigador a otro. Que un organismo pase a través de una malla de 1 mm también depende de si está vivo o muerto en el momento de la clasificación.

El término meiobentos fue acuñado por primera vez en 1942 por Molly Mare, pero los organismos que encajan en la categoría moderna de meiofauna se han estudiado desde el siglo XVIII.

Taxones de meiofauna

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  Live foraminifera Amonia tepida (Rotaliida)

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  Agua oso Hypsibius dujardini

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  Gastrotrich

Recolección del meiobentos

Van Veen agarrar

La meiofauna se encuentra con mayor frecuencia en ambientes sedimentarios, tanto en ambientes marinos como de agua dulce, desde el litoral hasta las profundidades marinas. También se pueden encontrar sobre sustratos duros viviendo sobre algas, el medio fital y animales sésiles (percebes, mejillones, etc.).

Metodologías de muestreo

El muestreo del meiobentos depende del entorno y de si se requieren muestras cuantitativas o cualitativas. En el ambiente sedimentario, la metodología utilizada también depende de la morfología física del sedimento. Para el muestreo cualitativo dentro de la zona litoral, tanto para sedimentos gruesos como finos, funcionará un balde y una pala. En las aguas sublitoral y profundas, se requiere algún tipo de cuchara (como la cuchara de muestreo Van Veen), aunque también funcionaría una malla fina (alrededor de 0,25 mm o menos).

Para el muestreo cuantitativo de ambientes sedimentarios en todas las profundidades, se ha diseñado una amplia variedad de muestreadores. La más simple es una jeringa de plástico con el extremo cortado para formar un descorazonador de pistón que se puede desplegar en la zona litoral, o en el sublitoral usando equipo SCUBA. En general, cuanto más profunda es el agua, más complicado se vuelve el proceso de muestreo. Para muestrear la meiofauna en sustratos duros o ambientes fitales o epizoóticos, la única metodología práctica es cortar o raspar un área conocida del sustrato y colocarlo en una bolsa de plástico.

Metodologías de extracción

Existe una gran variedad de métodos para extraer meiofauna de las muestras de su hábitat dependiendo de si se requieren especímenes vivos o fijos. Para extraer meiofauna viva, uno tiene que lidiar con la gran cantidad de especies que se adhieren o se adhieren al sustrato cuando se las perturba. Para lograr que la meiofauna se suelte, existen tres metodologías disponibles.

El primero, y el más simple, es el choque osmótico, que se logra sumergiendo la muestra en agua dulce durante unos segundos (esto solo funciona para muestras marinas). Esto hará que los organismos se liberen, después de lo cual se pueden sacudir para liberarlos del sustrato y filtrarlos a través de una malla de 45 μm y devolverlos inmediatamente al agua de mar filtrada fresca. Muchos organismos saldrán ilesos de este proceso siempre que el choque osmótico no dure demasiado.

La segunda metodología es el uso de un anestésico. La solución química preferida por los meiobentólogos es el cloruro de magnesio isotónico (7,5 g MgCl₂·6H₂O por 100 mL de agua destilada). La muestra se sumerge en la solución isotónica y se deja durante un período de 15 minutos, después de lo cual la meiofauna se libera del sustrato y se filtra nuevamente a través de una malla de 45 μm y se devuelve inmediatamente al agua de mar filtrada fresca.

La tercera metodología es la técnica de hielo de agua de mar de Uhlig. Esto se basa en que los organismos se mueven por delante de un frente de agua de mar helada que desciende a través de la muestra y, en última instancia, los obliga a salir del sedimento. Es más efectivo en muestras de regiones templadas y tropicales.

Para estudios importantes en los que se recolecta un gran número de muestras al mismo tiempo, las muestras normalmente se fijan con una solución de formalina al 10 % y la meiofauna se extrae en una fecha posterior. Hay dos metodologías principales de extracción. La primera, la decantación, funciona mejor con sedimentos gruesos. Las muestras se agitan en un exceso de agua, el sedimento se deja reposar brevemente y luego se filtra la meiofauna. La segunda metodología, la técnica de flotación, funciona mejor con sedimentos más finos, donde la masa de las partículas de sedimento es cercana a la de la meiofauna. La mejor solución para esta técnica es la sílice coloidal Ludox. La muestra se agita en la solución de Ludox y se deja reposar durante 40 minutos, después de lo cual se filtra la meiofauna. En sedimentos finos, la eficiencia de extracción mejora con la centrifugación. Con ambas metodologías, se deben realizar extracciones repetidas (al menos tres) con cada muestra para asegurar que se extrae al menos el 95% de la meiofauna.