TSI agar slant results: (from left) preinoculated (as control), P. aeruginosa, E. coli, Salmonella Typhimurium, Shigella flexneriLa prueba de Triple Azúcar Hierro (TSI) es una prueba microbiológica llamada así por su capacidad para evaluar la capacidad de un microorganismo para fermentar azúcares y producir sulfuro de hidrógeno. Se utiliza a menudo para diferenciar bacterias entéricas, como Salmonella y Shigella.
Composition
El tubo de ensayo inclinado TSI es un tubo de ensayo que contiene agar, un colorante sensible al pH (rojo fenol), 1 % de lactosa, 1 % de sacarosa, 0,1 % de glucosa, tiosulfato de sodio y sulfato ferroso o sulfato ferroso de amonio.Todos estos ingredientes se mezclan, se calientan hasta alcanzar la esterilidad y se dejan solidificar en el tubo de ensayo en un ángulo inclinado. La forma inclinada de este medio proporciona una variedad de superficies que están expuestas al aire con oxígeno en distintos grados (entorno aeróbico) o no expuestas al aire (entorno anaeróbico).El medio de agar TSI se desarrolló a partir del agar hierro de Kligler, utilizado para la determinación de bacterias fermentadoras de lactosa, y se añadió sacarosa para detectar también estas bacterias.
Interpretación de los resultados
Las bacterias que fermentan cualquiera de los tres azúcares del medio producen subproductos. Estos subproductos suelen ser ácidos, que cambian el color del colorante rojo sensible al pH (rojo fenol) a amarillo. La posición del cambio de color distingue la producción de ácido asociada a la fermentación de la glucosa de los subproductos ácidos de la fermentación de la lactosa o la sacarosa. Si esto ocurre, el sulfuro de hidrógeno recién formado (H 2S) reacciona con el sulfato ferroso en el medio para formar sulfuro ferroso, que es visible como un precipitado negro. Entre las bacterias productoras de sulfuro se incluyen Salmonella, Proteus, Citrobacter y Edwardsiella. El ennegrecimiento del medio casi siempre se observa en el fondo.Una bacteria que no fermenta la lactosa y fermenta la glucosa, inicialmente produce un fondo amarillo inclinado/amarillo (reacción ácido/ácido) después de 8 horas, pero luego se convierte en un fondo rojo inclinado/amarillo después de 24 horas (reacción álcali/ácido). En cambio, si fermenta tanto lactosa como glucosa, el resultado es un tubo amarillo/amarillo que permanece así debido a la gran cantidad de ácido producido en la reacción. El ennegrecimiento del fondo debido a la producción de H2S puede enmascarar la reacción ácida (amarillo) en el fondo del tubo. La Salmonella enterica serovar Typhi puede provocar el ennegrecimiento del medio en la interfaz entre el fondo y el tubo inclinado.Varias reacciones observadas en el agar TSIEn condiciones anaeróbicas (como las que se producen cerca del fondo del tubo), algunas bacterias utilizan el tiosulfato como aceptor de electrones y lo reducen a hidrógeno gaseoso. Este gas no es muy soluble y puede acumularse en forma de burbujas a lo largo del conducto de inoculación, entre el agar y el vidrio, o en el líquido que se acumula en el fondo del tubo inclinado. La producción de hidrógeno puede levantar el agar del fondo del tubo o fracturarlo (agrietarlo). El dióxido de carbono, si se produce, puede no aparecer en forma de burbujas debido a su mayor solubilidad en el medio.
Véase también
Cistine tripptic agar
Referencias
^"Reacciones SUI". Retrieved 2008-11-17.
^"TSI". Archivado desde el original el 2012-12-12. Retrieved 2008-11-17.
^"Triple Sugar Iron (TSI) - Principio de prueba, procedimiento, resultado". 2022-09-10. Retrieved 2024-02-28.
^"Triple Sugar Iron Interpretation". Archivado desde el original el 11 de septiembre de 2008. Retrieved 2008-11-17.
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Medios de crecimiento / placas de agar
Medios selectivos
Gráfico positivo
Actinomycetota
Mycobacterium tuberculosis
Löwenstein-Jensen medium
Middlebrook 7H9 Broth
Middlebrook 7H10 Agar
Middlebrook 7H11 Agar
Mycoplasma pneumoniae
El agar de Eaton
Bacillota
Corynebacterium diphtheriae
Hoyle agar
Enterococcus
Bile esculin agar
Lactobacillus
MRS agar
Lactococcus
M17 agar
Staphylococcus
Mannitol sala de agar
Baird-Parker agar
Vogel-Johnson agar
Gram negativo
Alphaproteobacteria
Brucella
Brucella agar
El medio de Farrell
Betaproteobacteria
Neisseria
Thayer-Martin agar
New York City agar
Gammaproteobacteria
Aggregatibacter actinomycetemcomitans
Tryptic soja-serum-bacitracin-vancomycin
Bordetella
Bordet-Gengou agar
Enterobacteriaceae
VRBD agar
Haemophilus influenzae/Legionella pneumophila
Buffered charcoal levadura extracto agar
Pseudomonas aeruginosa
Cetrimide agar
Salmonella
XLT agar
DCA agar
Salmonella/Shigella
XLD agar
Medios diferenciales
Grado negativo de fermentación de lactosa
MacConkey agar/Sorbitol-MacConkey agar
Eosin metilene azul
Endo agar
Bismuth sulfite agar
Hektoen enteric agar
Lysine iron agar
Agar de citrato de Simmons
TSI slant
Medios fúngicos
BAF agar
Czapek medium
Medio de prueba de dermatofito
MMN medium
Potato dextrose agar
Sabouraud agar
YEPD
YM
Medios no selectivos
Agar de sangre
Chocolate agar
Brote de Lysogenia
Nutrient agar
Conteo de placas agar
Tripticase soja agar
Brote de soja tríptica
Otros medios de comunicación no agrupados
Infusión del corazón cerebral
Agar Cystine – lactose–electrolyte deficiente
Cistine tripptic agar
Brote de fosfato de glucosa
Lauryl tryptose broth
Mannitol motility medium
Mueller-Hinton agar/PNP agar
R2A agar
Schädler agar
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