Hada mosca

Las Mymaridae, comúnmente conocidas como avispas de hadas o moscas de hadas, son una familia de avispas calcidoideas que se encuentran en regiones templadas, subtropicales y tropicales de todo el mundo. La familia contiene alrededor de 100 géneros con 1400 especies.

Las moscas de hadas son insectos muy pequeños, como la mayoría de las avispas calcidoideas, que en su mayoría miden entre 0,5 y 1,0 mm (0,020 a 0,039 pulgadas) de largo. Incluyen el insecto más pequeño conocido del mundo, con una longitud corporal de solo 0,139 mm (0,0055 pulgadas), y el insecto volador más pequeño conocido, de solo 0,15 mm (0,0059 pulgadas) de largo. Por lo general, tienen cuerpos negros, marrones o amarillos no metálicos. Las antenas de las hembras están distintivamente rematadas por segmentos en forma de maza, mientras que las antenas de los machos son como hilos. Sus alas suelen ser delgadas y poseen cerdas largas, lo que les da un aspecto peludo o plumoso, aunque algunas especies pueden tener alas rechonchas muy reducidas o carecer de alas por completo. Estas alas de aspecto inusual funcionan utilizando la resistencia del aire, que en su tamaño minúsculo es equivalente a moverse a través de la miel, por lo que funcionan como una especie de remos en miniatura que nadan por el aire. Se pueden distinguir de otros calcidoideos por el patrón de suturas en forma de H en la parte frontal de sus cabezas.

Las moscas de las hadas se encuentran entre los calcidoideos más comunes, pero rara vez las notamos debido a su tamaño extremadamente pequeño. Su esperanza de vida adulta es muy corta, por lo general solo unos días. Todas las moscas de las hadas conocidas son parasitoides de los huevos de otros insectos, y varias especies se han utilizado con éxito como agentes de control biológico de plagas. Las hembras abandonan el huevo huésped original para buscar nuevos huéspedes y depositar sus huevos en ellos, pero las moscas de las hadas macho se aparean con sus hermanas y mueren en el huevo huésped original.

El registro fósil de las moscas de las hadas se extiende al menos desde el Albiano (hace unos 107 millones de años) del Cretácico Inferior.

La familia Mymaridae fue establecida por primera vez en 1833 por el entomólogo irlandés Alexander Henry Haliday. Haliday y dos amigos cercanos, John Curtis y Francis Walker, entomólogos respetados por derecho propio, fueron influyentes en los primeros estudios de los himenópteros en el siglo XIX.

Haliday describió originalmente a las moscas de las hadas como la tribu "Mymares" de la familia "Chalcides". Basó sus descripciones en el género tipo Mymar, descrito por John Curtis en 1829.

Los intentos anteriores de clasificación de Walker trataron al grupo como un género y clasificaron a todas las demás avispas conocidas bajo él como subgéneros. Walker (quien era tristemente célebre por sus deficiencias en la nomenclatura sistemática) más tarde aceptó la clasificación de Haliday en una carta de 1839 y solicitó su ayuda para clasificar las avispas recogidas por Charles Darwin en su viaje en el HMS Beagle. Las "Mymares", así como otras "tribus", fueron elevadas al rango de familia (como Mymaridae) por Haliday en 1839.

Haliday describió a las moscas de las hadas como "los átomos mismos del orden Hymenoptera" y destacó la belleza de sus alas cuando se las observaba bajo el microscopio. Estas características de las moscas de las hadas también las hicieron populares entre los entomólogos y microscopistas de finales del siglo XIX y principios del XX. Los especímenes de moscas de las hadas bellamente montados del microscopista inglés de principios del siglo XX Fred Enock son posiblemente la colección más famosa.

El nombre genérico Mymar (y por extensión, Mymaridae) fue derivado por Curtis de la palabra griega μΰμαρ (mymar), una variante eólica del griego estándar μῶμος (mōmos, "mancha" o "borrón").

Los Mymaridae son los miembros más primitivos de la superfamilia Chalcidoidea. Alrededor de 1.424 especies de moscas de las hadas se agrupan en unos 100 géneros. De los géneros de moscas de las hadas existentes, Eustochomorpha es el más primitivo. Los géneros más grandes son Anagrus, Anaphes, Gonatocerus y Polynema, que comprenden alrededor de la mitad de todas las especies conocidas. Son las moscas de las hadas más comunes, seguidas de Alaptus, Camptoptera, Erythmelus, Ooctonus y Stethynium, que constituyen una cuarta parte adicional de las especies conocidas. Los Mymaridae se consideran monofiléticos, pero sus relaciones exactas con otros calcidoideos siguen sin estar claras.

No se han reconocido subfamilias comúnmente aceptadas, pero dos propuestas son notables. Annecke y Doutte (1961) propusieron las subfamilias Alaptinae y Mymarinae basándose en la morfología de los gásteres. Peck et al. (1964) propusieron las subfamilias Gonatocerinae y Mymarinae basándose en el número de segmentos (tarsómeros) en los tarsos. Ambos sistemas incluían categorías tribales adicionales. También se propuso una subfamilia fósil para un género recuperado del ámbar canadiense.

Las avispas de las hadas son insectos muy pequeños. Tienen una longitud corporal de 0,13 a 5,4 mm (0,0051 a 0,2126 pulgadas), típicamente de 0,5 a 1,0 mm (0,020 a 0,039 pulgadas). Sus cuerpos suelen ser de color negro, marrón o amarillo, sin la coloración metálica de algunas otras avispas. Se pueden distinguir de otros calcidoideos por tener un patrón de suturas en forma de H, conocidas como trabéculas o carinas, debajo de los ocelos más delanteros y los márgenes internos de los ojos. En raras ocasiones, las suturas también pueden extenderse detrás de los ocelos. Las avispas de las hadas tienen antenas largas, al menos tan largas como la cabeza y el mesosoma (parte media del cuerpo). Los torulos antenales (cavidades de las antenas) están situados en lo alto de la cabeza y cerca de los márgenes de los ojos. Están separados por una distancia de tres a cinco veces su propio diámetro. En cambio, las antenas de otros calcidoideos están separadas por un solo diámetro. En las hembras, las antenas están rematadas con segmentos en forma de maza, conocidos como clava. En los machos, las antenas son filiformes (con forma de hilo).

La mayoría de las moscas de las hadas poseen alas con cerdas largas (setas marginales) en los bordes. Las alas anteriores suelen tener hipoquetas. Se trata de cerdas pequeñas (setas) que apuntan claramente hacia atrás en la superficie ventral de la membrana del ala.

Las alas de las moscas de las hadas presentan una variación considerable en comparación con otros calcidoideos. Las alas completamente desarrolladas (macrópteros) de las moscas de las hadas son normalmente planas con puntas redondeadas y son varias veces más largas que anchas. Este tipo de alas suele presentar variación interespecífica e intergenérica en términos de la relación longitud/anchura y la forma del contorno del ala (especialmente de las puntas y los márgenes posteriores) de las alas anteriores. En algunas especies, las alas anteriores son relativamente anchas, como en el género Paranaphoidea, que tiene alas anteriores solo dos veces y media más largas que anchas. En otras especies, las alas anteriores son extremadamente estrechas, como en Cleruchus bicilliatus, cuyas alas anteriores son unas treinta veces más largas que anchas.

Cremnomymar sp. (mujer) exhibiendo las alas macropterosas y planas de las hadas. Barra de escala = 1 mm

Grandes alas reducidas (micropios) en Paracmotemnus sp. (mujer)

La curvatura de las alas anteriores, que es claramente convexa o en forma de cúpula, también la presentan al menos una especie de los géneros Cremnomymar, Mymarilla, Parapolynema y Richteria. La mayoría de estas especies habitan en ambientes particularmente duros y azotados por el viento, y la curvatura puede ayudar a absorber y retener el calor o evitar que las moscas de las hadas se las lleve el viento.

Las alas posteriores son pecioladas y muy estrechas. No presentan mucha variación, a diferencia de las alas anteriores. Pueden ser estrechas y filiformes (como en los miembros del género Mymar) o relativamente anchas (como en los miembros del género Paranaphoidea). En casos raros, las alas posteriores también pueden presentar curvatura, con márgenes anterior y posterior convexos o cóncavos.

Algunas moscas de las hadas poseen alas ligeramente reducidas (braquípteras) o muy reducidas (micrópteras), mientras que otras pueden incluso carecer por completo de ellas (ápteras). La reducción o ausencia de alas suele ser exhibida por al menos un sexo (normalmente la hembra) de las especies que buscan huevos hospedadores en áreas confinadas (como la hojarasca, el suelo o los túbulos de los hongos de repisa). La reducción o ausencia de alas también la exhiben las especies que habitan hábitats ventosos como islas oceánicas o elevaciones altas, particularmente las especies endémicas que se encuentran en hábitats aislados o están ubicadas lejos del continente más cercano. En estos hábitats, las alas solo serían un obstáculo para las moscas de las hadas, por lo que están fuertemente seleccionadas en contra en la evolución. Por ejemplo, las tres especies conocidas de moscas de las hadas que se encuentran en las islas del extremo sur de Campbell y Auckland del Pacífico sudoccidental y Georgia del Sur del Atlántico sur, así como el 20% de la fauna de moscas de las hadas en las islas Juan Fernández, la isla Norfolk y la isla Lord Howe, son todas sin alas o con alas cortas. Si bien también se pueden encontrar especies sin alas o de alas cortas en islas cercanas a los continentes y en hábitats continentales, por lo general constituyen solo un pequeño porcentaje del número total de especies.

Debido a su pequeño tamaño, las moscas de las hadas a veces pueden confundirse con miembros de las familias Aphelinidae y Trichogrammatidae, pero los miembros de estas otras familias pueden distinguirse fácilmente por tener antenas mucho más cortas.

Las avispas calciformes son unas de las avispas calciformes más comunes, pero debido a su diminuto tamaño rara vez son detectadas por los humanos. Esta aparente invisibilidad, sus cuerpos delicados y sus alas con flecos de pelo les han valido su nombre común.

Las mariposas se encuentran en regiones templadas y tropicales de todo el mundo. La mayor cantidad de especies se encuentra en los bosques tropicales, y la mayor diversidad de géneros se encuentra en el hemisferio sur (América del Sur, Nueva Zelanda y Australia). En el Neártico (América del Norte), solo se encuentran alrededor de 28 (de alrededor de 100) géneros y 120 (de alrededor de 1424) especies.

Las mariposas pueden sobrevivir en todo tipo de hábitats terrestres, desde desiertos hasta selvas tropicales. También se sabe que al menos cinco especies son acuáticas y habitan en estanques y arroyos de agua dulce. Entre ellas se encuentra Caraphractus cinctus, que utiliza sus alas como remos para nadar. Pueden permanecer bajo el agua hasta 15 días. Debido a su pequeño tamaño, deben salir del agua trepando por tallos de plantas que sobresalen de la superficie, ya que de otra manera no podrían romper la tensión superficial del agua.

Todas las moscas de las hadas conocidas son parasitoides de huevos de otros insectos. Estos huevos se ponen comúnmente en lugares ocultos, como en los tejidos de las plantas o bajo tierra. No parecen ser específicas de una especie cuando se trata de elegir huéspedes. Se sabe que algunas especies parasitan insectos de varias familias de un solo orden. Sus huéspedes más comúnmente observados son insectos pertenecientes al orden Hemiptera (chinches verdaderas), especialmente Auchenorrhyncha (saltahojas, cigarras y afines) y Coccoidea (insectos escama), pero esto podría deberse simplemente a que estos grupos están mejor estudiados. Otros órdenes de huéspedes importantes incluyen Coleoptera (escarabajos), Diptera (moscas verdaderas), Odonata (libélulas y afines), Psocoptera (piojos de los libros y afines) y Thysanoptera (trips). Se conocen huéspedes definitivamente para solo una cuarta parte de los géneros conocidos.

Entre las moscas de las hadas se encuentra el insecto más pequeño conocido, Dicopomorpha echmepterygis de Illinois, cuyos machos miden sólo 0,139 mm (0,0055 pulgadas) de largo. No tienen alas ni ojos, sus bocas son simples agujeros y sus antenas son simplemente masas esféricas. Los extremos de sus patas forman ventosas con las que sujetan a las hembras el tiempo suficiente para fecundarlas. Sus cuerpos son más pequeños que los de un paramecio unicelular. Cuatro machos, alineados uno junto al otro, abarcarían aproximadamente el ancho de un punto al final de una frase impresa típica. Las hembras de la especie, sin embargo, son típicas moscas de las hadas y son mucho más grandes. El insecto volador más pequeño es también un mimárido, Kikiki huna de Hawái, que mide 0,15 mm (0,0059 pulgadas) de largo.

Se sabe muy poco sobre la historia de vida de las moscas de las hadas, ya que solo se han observado extensamente unas pocas especies. Por lo general, son solitarias, pero a veces pueden ser gregarias.

El apareamiento ocurre inmediatamente después de la emergencia. No se han observado comportamientos de cortejo y cada hembra es fertilizada por un solo macho. Una vez fertilizados, los machos pierden interés en la hembra y la hembra también pierde interés en seguir apareándose. En Prestwichia aquatica, se ha informado que el apareamiento ocurre antes de que las hembras emerjan de los huevos del huésped. En P. aquatica, Anagres incarnatus, A. armatus y Anaphes nipponicus, las hembras superan en número a los machos en cada nidada; de dos a 20 hembras por cada macho. En Polynema striaticorne, es lo opuesto, con machos que superan en número a las hembras en una proporción de tres o más a uno. En Anagrus atomus, A. frequens, A. optabilis, A. perforator y Polynema euchariformes, las hembras pueden reproducirse sin machos (partenogénesis), aunque a veces todavía se pueden encontrar machos en las nidadas.

La vida adulta de las moscas de las hadas es muy corta. Los adultos de Stethynium (machos y hembras) pueden vivir solo uno o dos días. En Anagrus, dependiendo de la especie, la vida varía de tres a once días. Cada hembra fertilizada (o partenogénica) puede poner un máximo de unos 100 huevos. El acceso a los alimentos puede prolongar la vida y aumentar la fecundidad. En Gonatocerus, si no se encuentran huéspedes, las hembras pueden reabsorber los huevos, reteniendo energía para vivir más tiempo y aumentar la posibilidad de encontrar un huésped.

Después de emerger, las hembras buscan rápidamente huevos hospedadores adecuados golpeando con sus antenas los tallos o las cortezas de las plantas. Cuando encuentran una cicatriz reveladora dejada por los insectos que ponen huevos, la hembra insertará sus antenas en el hueco y comprobará si los huevos son adecuados. Si lo son, introducirá su ovipositor en todos los huevos y pondrá sus propios huevos en su interior en rápida sucesión. Mientras hace esto, mantiene el contacto con cada uno de los huevos con sus antenas.

La mayoría de las moscas de las hadas necesitan que los embriones dentro de los huevos se desarrollen lo suficiente, pero no demasiado, antes de atacarlos, ya que sus crías no pueden madurar si los huevos son demasiado nuevos o si los embriones en su interior están demasiado avanzados. Los embriones hospedadores más viejos son aparentemente más difíciles de digerir para las larvas de las moscas de las hadas, pero hay excepciones. Algunas especies de Polynema pueden atacar a los embriones en varias etapas de desarrollo. Se ha registrado que producen tres generaciones sucesivas en una sola cría de la cigarra Ceresa.

Todas las moscas de las hadas poseen huevos elipsoidales con un tallo largo y afilado. Se desarrollan rápidamente una vez puestos y pueden eclosionar en un período de seis horas a dos días. Pueden producirse varias generaciones en un año, a menudo en diferentes huéspedes.

Las moscas de las hadas tienen de dos a cuatro estadios larvarios, todos aparentemente sin espiráculos ni tráqueas funcionales. La metamorfosis ocurre completamente dentro del huevo hospedador. Son peculiares para los insectos que exhiben una metamorfosis completa (holometabolismo) en el sentido de que producen dos tipos distintos de estadios larvarios antes de la pupación. En algunas moscas de las hadas, como Anaphes, el primer estadio es una larva "mimariforme" muy móvil. El segundo estadio, sin embargo, es una larva completamente inmóvil, con forma de saco, sin segmentos, espinas o cerdas discernibles. En otras moscas de las hadas, como Anagrus, esto es al revés. El primer estadio es inmóvil, mientras que el segundo estadio es una larva "histriobdélida" muy distintiva y muy activa. Al menos un estadio de las larvas es capaz de pasar el invierno cuando se pone en estaciones más frías.

Las moscas de las hadas se han utilizado para el control biológico de diversas plagas de cultivos. Son especialmente valoradas por su capacidad para localizar los huevos de sus huéspedes. De las moscas de las hadas, el género cosmopolita Anagrus es el más prometedor, ya que puede parasitar una amplia gama de huéspedes. Se conocen al menos diez casos de introducciones exitosas de moscas de las hadas para controlar plagas.

En Hawái, Anagrus optabilis se ha utilizado con éxito para controlar la cigarra de la caña de azúcar (Perkinsiella saccharicida). Anagrus epos también se ha utilizado con eficacia contra la cigarra de la uva (Erythroneura elegans) y la cigarra de la uva variegada (Erythroneura variabilis). Al principio, tuvo un éxito limitado, ya que las avispas morían en invierno por falta de huéspedes. La plantación de moras silvestres (Rubus spp.) cerca de viñedos en California trajo consigo la cigarra de la zarzamora (Dikrella cruentata). Aunque no son plagas, D. cruentata resultó ser un huésped suficiente para A. epos en invierno, lo que les permitió sobrevivir hasta el año siguiente. También se ha demostrado que son capaces de sobrevivir el invierno en las cigarras de la ciruela pasa (Edwardsiana prunicola).

También se estudiaron Gonatocerus triguttatus, Gonatocerus tuberculifemur y Anagrus epos (que probablemente sea un complejo de especies) para su posible uso en el control de la chicharrita de alas de vidrio (Homalodisca vitripennis) en California. Gonatocerus triguttatus y Gonatocerus ashmeadi se introdujeron finalmente en California en 2000. Resultó ser muy exitoso, causando una disminución de aproximadamente el 90% en las poblaciones de chicharritas de alas de vidrio.

En 2005, se utilizó Gonatocerus ashmeadi contra las especies invasoras de la especie Chinchorro de alas cristalinas en Tahití y Moorea, en la Polinesia Francesa. Una vez más, resultó muy eficaz, ya que redujo la densidad de la plaga en un 95 % aproximadamente en tan solo un año después de su introducción. Posteriormente, también se liberó en las Islas de la Sociedad, las Marquesas y las Islas Australes, donde se obtuvieron resultados similares contra las especies de la especie Chinchorro de alas cristalinas.

En Sudáfrica, se introdujo con mucho éxito Anaphes nitens para controlar una especie no descrita de gorgojo del eucalipto (Gonipterus sp.). En Australia e Israel, en 2006 se estaban investigando miembros del género Stethynium como posibles agentes de control biológico de plagas de cultivos formadoras de agallas, como Ophelimus maskelli.

Fossil record

Las moscas de las hadas están bien representadas en inclusiones fósiles de ámbar, copal y fósiles de compresión. Sus fósiles se han encontrado desde el Cretácico Inferior hasta el Mioceno. De hecho, es la única familia de calcidoideos que se conoce con certeza que data del período Cretácico.

Los fósiles de moscas de las hadas del Paleógeno y el Neógeno fueron descritos por primera vez en 1901 por Fernand Anatole Meunier. Describió fósiles de moscas de las hadas del ámbar del Báltico, la mayoría de ellos del Eoceno (hace entre 55 y 37 millones de años). En 1973, Richard L. Doutt describió varias especies del ámbar del Burdigaliense (hace entre 20 y 15 millones de años) de México. En 1983, Csaba Thuróczy describió otra especie del ámbar del Báltico, esta vez del Oligoceno (hace entre 33 y 23 millones de años). Y en 2011, John T. Huber y Dale Greenwalt describieron fósiles de moscas de las hadas de los yacimientos petrolíferos de la Formación Kishenehn (edad Luteciana) de Montana. Estos fósiles comprendían dos nuevos géneros y seis especies.

Las moscas de las hadas del Cretácico son mucho más raras. En 1975, Carl M. Yoshimoto describió cuatro géneros de moscas de las hadas del Cretácico de Canadá. En 2011, John T. Huber y George Poinar Jr. describieron el género Myanmymar a partir de ámbar birmano. Se remonta al Cenomaniano Inferior (hace unos 100 millones de años) del Cretácico Superior y es la mosca de las hadas (y calcidoideo) más antigua conocida. Son sorprendentemente muy similares a los géneros modernos, aunque con una mayor cantidad de segmentos flagelares y venas de las alas anteriores más largas. Las características del fósil (teniendo en cuenta los descubrimientos anteriores de Yoshimoto) los llevaron a concluir que las moscas de las hadas pueden haber existido mucho antes que Myanmymar, o pueden haberse diversificado rápidamente durante ese período de tiempo.

Genera

Mymaridae incluye los géneros que se enumeran a continuación. Allomymar y Metanthemus han sido transferidos a la familia Aphelinidae. El género fósil Protooctonus ha sido transferido a la familia Mymarommatidae, y ahora se considera un sinónimo de Archaeromma. Nesopolynema, Oncomymar y Scolopsopteron fueron sinonimizados con el género Cremnomymar en 2013, y sus especies ahora se clasifican bajo este último. Shillingsworthia también está excluida, ya que era un concepto hipotético irónico de una especie del planeta Júpiter, "descrita" por Alexandre Arsène Girault en 1920 para desprestigiar a su colega Johann Francis Illingworth.
Los géneros marcados con † están extintos.

Allanagrus magniclava (mujer)

Richteria ara (mujer) con las típicas horquillas dobles de la especie. Barra de escala = 1 mm

Camptopteroides verrucosa (mujer)

Enneagmus pristinus (mujer) fosilizado en ámbar

Extant genera

• Acanthomymar Subba Rao, 1970
• Acmopolynema Ogloblin, 1946
• Acmotemnus Noyes & Valentine, 1989
• Agalmopolynema Ogloblin, 1960
• Alaptus Ferrière, 1930
• Allanagrus Noyes & Valentine, 1989
• Allarescon Noyes & Valentine, 1989
• Anagroidea Girault, 1915
• Anagrus Haliday, 1833
• Anaphes Haliday, 1833
• Anneckia Subba Rao, 1970
• Apoxypteron Noyes & Valentine, 1989
• Arescon Walker, 1846
• Australomymar Girault, 1929
• Baburia Hedqvist, 2004
• Bakkendorfia Mathot, 1966
• Boccacciomymar Triapitysn " Berezovskiy, 2007
• Borneomymar Huber, 2002
• Boudiennyia Girault, 1937
• Bruchomymar Ogloblin, 1939
• Caenomymar Yoshimoto, 1990
• Calipo Ogloblin, 1955
• Camptoptera Förster, 1856
• Camptopteroides Viggiani, 1974
• Caraphractus Walker, 1846
• Ceratanaphes Noyes & Valentine, 1989
• Chaetomymar Ogloblin, 1946
• Chrysoctonus Mathot, 1966
• Cleruchoides Lin " Huber, 2007
• Cleruchus Enock, 1909
• Cnecomymar Ogloblin, 1963
• Cremnomymar Ogloblin, 1952
• Cybomymar Noyes & Valentine, 1989
• Dicopomorfa Ogloblin, 1955
• Dicopus Enock, 1909
• Dorya Noyes & Valentine, 1989
• Entrichopteris Yoshimoto, 1990
• Eofoersteria Mathot, 1966
• Erdosiella Soyka, 1956
• Erythmelus Enock, 1909
• Eubroncus Yoshimoto, Kozlov " Trjapitzin, 1972
• Eucleruchus Ogloblin, 1940
• Eustochomorfa Girault, 1915
• Eustochus Haliday, 1833
• Paramicomymar Yoshimoto, 1990
• Gahanopsis Ogloblin, 1946
• Ganomymar De Santis, 1972
• Gonatocerus Nees, 1834
• Haplochaeta Noyes & Valentine, 1989
• Himopolynema Taguchi, 1977
• Idiota Gahan, 1927
• Ischiodasys Noyes & Valentine, 1989
• Kalopolynema Ogloblin, 1960
• Kikiki. Huber & Beardsley, 2000
• Kompsomymar Lin " Huber, 2007
• Krokella Huber, 1993
• Kubja Subba Rao, 1984
• Litus Haliday, 1833
• Macrocamptoptera Girault, 1910
• Malfattia Meunier, 1901
• Mimalaptus Noyes & Valentine, 1989
• Mymar Curtis, 1829
• Mymarilla Westwood, 1879
• Myrmecomymar Yoshimoto, 1990
• Narayanella Subba Rao, 1976
• Neolitus Ogloblin, 1935
• Neomymar Crawford, 1913
• Neostethynium Ogloblin, 1964
• Neserythmelus Noyes & Valentine, 1989
• Nesomymar Valentine, 1971
• Nesopatasson Valentine, 1971
• Notomymar Doutt " Yoshimoto, 1970
• Omyomymar Schauff, 1983
• Ooctonus Haliday, 1833
• Palaeoneura Waterhouse, 1915
• Palaeopatasson Witsack, 1986
• Paracmotemnus Noyes & Valentine, 1989
• Paranaphoidea Girault, 1913
• Parapolynema Fidalgo, 1982
• Parastethynium Lin " Huber, 2007
• Platyfrons Yoshimoto, 1990
• Platypolynema Ogloblin, 1960
• Platystethynium Ogloblin, 1946
• Polynema Haliday, 1833
• Polynemoidea Girault, 1913
• Polynemula Ogloblin, 1967
• Prionaphes Hincks, 1961
• Pseudanaphes Noyes & Valentine, 1989
• Pseudocleruchus Donev " Huber, 2002
• Ptilomymar Annecke " Doutt, 1961
• Restisoma Yoshimoto, 1990
• Richteria Girault, 1920
• Esquizofragma Ogloblin, 1949
• Scleromymar Noyes & Valentine, 1989
• Steganogaster Noyes & Valentine, 1989
• Stephanocampta Mathot, 1966
• Stephanodes Enock, 1909
• Stethynium Enock, 1909
• Tanyostethium Yoshimoto, 1990
• Tetrapolynema Ogloblin, 1946
• Tinkerbella Huber " Noyes, 2013
• Zelanaphes Noyes & Valentine, 1989

Fossil genera

Estos géneros fósiles están clasificados bajo Mymaridae:

• †Carpenteriana Yoshimoto, 1975 Canadian amber, Late Cretaceous (Campanian)
• †Enneagmus Yoshimoto, 1975 Amber canadiense, Campanian
• †Eoanaphes Huber dentro Huber & Greenwalt, 2011 Kishenehn Formation, Montana, Eocene (Lutecia)
• †Eoeustochus Huber dentro Huber & Greenwalt, 2011 Kishenehn Formation, Montana, Lutetian
• †Macalpinia Yoshimoto, 1975 Amber canadiense, Campanian
• †Myanmymar Huber dentro Huber & Poinar, 2011 Burmese amber, Late Cretaceous (Cenomanian)
• †Triadomerus Yoshimoto, 1975 Amber canadiense, Campanian

Colección y conservación

A pesar de su relativa abundancia, las moscas de las hadas son impopulares entre los coleccionistas de insectos modernos debido a la gran dificultad que supone recolectarlas. Al tratarse de una de las familias de insectos menos conocidas, aún queda por descubrir una gran cantidad de información sobre ellas. Se trata de un área de la entomología en la que un naturalista aficionado aún puede realizar contribuciones significativas.

En el siglo XIX, Curtis describió los métodos que Haliday utilizaba para recolectar mariposas de la siguiente manera:

El minuto Hymenoptera se recoge mejor golpeando, y barriendo con, una red hecha de gasa fina, y el Sr. Haliday me recomienda recogerlos en quills, y después vaciar su contenido en agua caliente, por lo que sus alas se expanden naturalmente; luego introduciendo una tarjeta debajo de ellos para sacarlos del agua, arreglando las piernas y alas cuando sea necesario con un lápiz de pelo de camello,

—John Curtis, Entomología Británica Vol. 7 (1830)

El mejor método de recolección moderno es el uso de trampas Malaise. Requieren poco mantenimiento y pueden recolectar insectos en gran abundancia. Otros métodos efectivos incluyen la trampa de bandeja amarilla, las redes de barrido y la trampa de succión. La recolección directa de la hojarasca con embudos Berlese también puede dar como resultado especímenes que no se pueden recolectar por otros medios.

La cría es otro método que puede resultar muy beneficioso. Se puede realizar con huevos hospedadores silvestres o preparados en laboratorio que se exponen en hábitats adecuados al aire libre. Luego, una vez que haya pasado suficiente tiempo, se pueden recoger y examinar para detectar el desarrollo de las moscas de las hadas. Con este método, es posible observar la historia de vida y determinar los hospedadores de especies particulares de moscas de las hadas descubiertas.

La conservación de las moscas de las hadas (y otros insectos pequeños) es un problema. Su diminuto tamaño requiere métodos especiales. Los especímenes deben secarse si se recogen húmedos, por ejemplo, si se utiliza alcohol etílico como agente letal. El secado puede hacer que los especímenes se vuelvan extremadamente frágiles, por lo que también se debe tener especial cuidado de no desintegrarlos. El montaje de los especímenes (preferiblemente en portaobjetos permanentes) también requiere mucho tiempo y mucha práctica. Se engoman o pegan sobre tarjetas, ya que no se pueden montar en alfileres como los insectos más grandes.

Véase también

• Control biológico de plagas
• Avispa parasitoide
• Trichogrammatidae
• Huevo de trofeos

Referencias

1. ^ Polaszek, Andrew. "Fairy fly (Himopolynema), parasitoid wasp". Wellcome Collection. Retrieved 15 de septiembre 2019.
2. ^ a b Kari T. Ryder Wilkie. "Francis Walker (1809-1874)". Global Ant Project – World Ant Taxonomists. Archivado desde el original el 2012-03-27. Retrieved 2011-09-28.
3. ^ L. Watson; M. J. Dallwitz. "Insectos Británicos". DELTA, Instituto de Botánica, Academia China de Ciencias. Archivado desde el original en 2019-10-08. Retrieved 2011-09-28.
4. ^ a b Alexander Henry Haliday (1833). "Un ensayo sobre la clasificación del parasitario Hymenoptera de Gran Bretaña que corresponde con el Ichneumones minuti de Linnaeus". The Entomological Magazine. 1.
5. ^ "Cartas de Francis Walker a Alexander Henry Haliday (29 de julio de 1839)". Wikisource.
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Enlaces externos

• USDA Mymaridae
• Ponent Images
• Universal Chalcidoidea Base de datos
• Biocontrol del GWSS usando un Mymarid en la Polinesia Francesa