Enzima alostérica
Las enzimas alostéricas son enzimas que cambian su conjunto conformacional al unirse a un efector (modulador alostérico), lo que da como resultado un cambio aparente en la afinidad de unión en un sitio de unión de ligando diferente. Esta "acción a distancia" a través de la unión de un ligando que afecta la unión de otro en un sitio claramente diferente, es la esencia del concepto alostérico. El alosterio desempeña un papel crucial en muchos procesos biológicos fundamentales, incluidos, entre otros, la señalización celular y la regulación del metabolismo. Las enzimas alostéricas no necesitan ser oligómeros como se creía anteriormente y, de hecho, muchos sistemas han demostrado alosterio dentro de enzimas individuales. En bioquímica, la regulación alostérica (o control alostérico) es la regulación de una proteína mediante la unión de una molécula efectora en un sitio distinto del sitio activo de la enzima.
El sitio al que se une el efector se denomina sitio alostérico. Los sitios alostéricos permiten que los efectores se unan a la proteína, lo que a menudo produce un cambio conformacional que involucra la dinámica de la proteína. Los efectores que mejoran la actividad de la proteína se denominan activadores alostéricos, mientras que los que disminuyen la actividad de la proteína se denominan inhibidores alostéricos.
Las regulaciones alostéricas son un ejemplo natural de bucles de control, como la retroalimentación de productos posteriores o la retroalimentación de sustratos anteriores. La alosteria de largo alcance es especialmente importante en la señalización celular. La regulación alostérica también es particularmente importante en la capacidad de la célula para ajustar la actividad enzimática.
El término alosterio proviene del griego allos (ἄλλος), "otro", y stereos (στερεὀς), "sólido (objeto)." Esto se refiere al hecho de que el sitio regulador de una proteína alostérica es físicamente distinto de su sitio activo.
El catalizador proteico (enzima) puede ser parte de un complejo de múltiples subunidades y/o puede asociarse transitoriamente o permanentemente con un cofactor (por ejemplo, trifosfato de adenosina). La catálisis de las reacciones bioquímicas es vital debido a las velocidades de reacción muy bajas de las reacciones no catalizadas. Un factor clave de la evolución de las proteínas es la optimización de dichas actividades catalíticas a través de la dinámica de las proteínas.
Mientras que las enzimas sin dominios/subunidades acoplados muestran una cinética de Michaelis-Menten normal, la mayoría de las enzimas alostéricas tienen múltiples dominios/subunidades acoplados y muestran una unión cooperativa. En términos generales, dicha cooperatividad da como resultado que las enzimas alostéricas muestren una dependencia sigmoidea de la concentración de sus sustratos en sistemas positivamente cooperativos. Esto permite que la mayoría de las enzimas alostéricas varíen en gran medida la producción catalítica en respuesta a pequeños cambios en la concentración del efector. Las moléculas efectoras, que pueden ser el propio sustrato (efectores homotrópicos) o alguna otra molécula pequeña (efector heterotrópico), pueden hacer que la enzima se vuelva más o menos activa al redistribuir el conjunto entre los estados de mayor y menor afinidad. Los sitios de unión para los efectores heterotrópicos, llamados sitios alostéricos, generalmente están separados del sitio activo pero acoplados termodinámicamente. La Base de datos alostérica (ASD, http://mdl.shsmu.edu.cn/ASD) ofrece un recurso central para la visualización, búsqueda y análisis de la estructura, función y anotación relacionada de moléculas alostéricas, incluidas las enzimas alostéricas y sus moduladores. Cada enzima está anotada con una descripción detallada del alosterio, el proceso biológico y las enfermedades relacionadas, y cada modulador con afinidad de unión, propiedades fisicoquímicas y área terapéutica.
Propiedades cinéticas
La hemoglobina, aunque no es una enzima, es el ejemplo canónico de una molécula de proteína alostérica, y una de las primeras en tener su estructura cristalina resuelta (por Max Perutz). Más recientemente, la enzima de E. coli aspartato carbamoiltransferasa (ATCasa) se ha convertido en otro buen ejemplo de regulación alostérica.
Las propiedades cinéticas de las enzimas alostéricas se explican a menudo en términos de un cambio conformacional entre un estado "tenso" o T de baja actividad y baja afinidad y un estado "relajado" o R de alta actividad y alta afinidad. Se ha demostrado que estas formas enzimáticas estructuralmente distintas existen en varias enzimas alostéricas conocidas.
Sin embargo, la base molecular de la conversión entre los dos estados no se comprende bien. Se han propuesto dos modelos principales para describir este mecanismo: el "modelo concertado" de Monod, Wyman y Changeux, y el "modelo secuencial" de Koshland, Nemethy y Filmer.
En el modelo concertado, se cree que la proteína tiene dos estados globales de “todo o nada”. Este modelo está respaldado por la cooperatividad positiva, donde la unión de un ligando aumenta la capacidad de la enzima para unirse a más ligandos. El modelo no está respaldado por la cooperatividad negativa, donde la pérdida de un ligando hace que sea más fácil para la enzima perder más.
En el modelo secuencial hay muchos estados de energía y conformacionales globales diferentes. La unión de un ligando modifica la enzima para que pueda unirse a más ligandos con mayor facilidad, es decir, cada vez que se une a un ligando, quiere unirse a otro.
Sin embargo, ninguno de los dos modelos explica por completo la unión alostérica. El uso combinado reciente de técnicas físicas (por ejemplo, cristalografía de rayos X y dispersión de rayos X de ángulo pequeño en solución o SAXS) y técnicas genéticas (mutagénesis dirigida al sitio o SDM) puede mejorar nuestra comprensión de la alosteria.
Referencias
- ^ a b Monod J, Wyman J, Changeux JP (mayo de 1965). "Sobre la naturaleza de las transiciones alostericas: un modelo plausible". Journal of Molecular Biology. 12: 88–118. doi:10.1016/s0022-2836(65)80285-6. PMID 14343300.
- ^ Gohara DW, Di Cera E (noviembre de 2011). "La alostería en proteasas como la trippsia sugiere nuevas estrategias terapéuticas". Tendencias en la Biotecnología. 29 (11): 577–85. doi:10.1016/j.tibtech.2011.06.001. PMC 3191250. PMID 21726912.
- ^ Bu Z, Callaway DJ (2011). "Proteínas MOVE! Dinámica de proteínas y alostería de largo alcance en señalización celular". Avances en Química Proteína y Biología Estructural. 83: 163–221. doi:10.1016/B978-0-12-381262-9.00005-7. ISBN 9780123812629. PMID 21570668.
- ^ Kamerlin, S. C.; Warshel, A (2010). "En el amanecer del siglo XXI: ¿Es dinámica el eslabón perdido para entender la catalisis de enzimas?". Proteínas: Estructura, Función y Bioinformática. 78 (6): 1339–75. doi:10.1002/prot.22654. PMC 2841229. PMID 20099310.
- ^ Huang Z, Zhu L, Cao Y, Wu G, Liu X, Chen Y, Wang Q, Shi T, Zhao Y, Wang Y, Li W, Li Y, Chen H, Chen G, Zhang J (enero de 2011). "ASD: una base de datos completa de proteínas y moduladores alostericos". Nucleic Acids Research. 39 (Tema de la base de datos): D663–9. doi:10.1093/nar/gkq1022. PMC 3013650. PMID 21051350.
- ^ Koshland DE, Némethy G, Filmer D (enero de 1966). " Comparación de datos de unión experimental y modelos teóricos en proteínas que contienen subunidades". Bioquímica. 5 (1): 365–85. doi:10.1021/bi00865a047. PMID 5938952.
Enlaces externos
- Bioquímica 6a Ed, Stryer Berg y Tymoczko