Clasificación de Baltimore
La clasificación de Baltimore es un sistema que se utiliza para clasificar los virus según su forma de síntesis del ARN mensajero (ARNm). Al organizar los virus según su forma de producción del ARNm, es posible estudiar los virus que se comportan de manera similar como un grupo distinto. Se describen siete grupos de Baltimore que tienen en cuenta si el genoma viral está formado por ácido desoxirribonucleico (ADN) o ácido ribonucleico (ARN), si el genoma es monocatenario o bicatenario y si el sentido de un genoma de ARN monocatenario es positivo o negativo.
La clasificación de Baltimore también se corresponde estrechamente con la forma de replicar el genoma, por lo que la clasificación de Baltimore es útil para agrupar los virus tanto para la transcripción como para la replicación. Ciertos temas relacionados con los virus están asociados con múltiples grupos de Baltimore específicos, como las formas específicas de traducción del ARNm y la gama de hospedadores de los diferentes tipos de virus. Las características estructurales, como la forma de la cápside viral, que almacena el genoma viral, y la historia evolutiva de los virus no están necesariamente relacionadas con los grupos de Baltimore.
La clasificación de Baltimore fue creada en 1971 por el virólogo David Baltimore. Desde entonces, se ha vuelto común entre los virólogos utilizar la clasificación de Baltimore junto con la taxonomía estándar de virus, que se basa en la historia evolutiva. En 2018 y 2019, la clasificación de Baltimore se integró parcialmente en la taxonomía de virus basándose en evidencia de que ciertos grupos descendían de ancestros comunes. Varios reinos y filos ahora corresponden a grupos específicos de Baltimore.
Sinopsis
La clasificación de Baltimore agrupa a los virus en función de su modo de síntesis del ARNm. Entre las características directamente relacionadas con esto se encuentran si el genoma está formado por ácido desoxirribonucleico (ADN) o ácido ribonucleico (ARN), la hebra del genoma, que puede ser monocatenaria o bicatenaria, y el sentido de un genoma monocatenario, que puede ser positivo o negativo. La principal ventaja de la clasificación de Baltimore es que al clasificar los virus según las características antes mencionadas, los virus que se comportan de la misma manera pueden estudiarse como grupos distintos. Hay siete grupos de Baltimore numerados con números romanos, que se enumeran a continuación.
- Grupo I: virus dobles de ADN
- Grupo II: virus de ADN de una sola banda
- Grupo III: virus de ARN dobles
- Group IV: positive sense single-stranded RNA viruses
- Group V: negative sense single-stranded RNA viruses
- Grupo VI: virus de ARN monoplazados con un ADN intermedio en su ciclo de vida
- Grupo VII: virus de ADN dobles con un ARN intermedio en su ciclo de vida
La clasificación de Baltimore se basa principalmente en la transcripción del genoma viral, y los virus dentro de cada grupo suelen compartir las formas en que se produce la síntesis del ARNm. Si bien no es el enfoque directo de la clasificación de Baltimore, los grupos están organizados de tal manera que los virus de cada grupo también suelen tener los mismos mecanismos de replicación del genoma viral. Debido a esto, la clasificación de Baltimore proporciona información sobre las partes de transcripción y replicación del ciclo de vida viral. Las características estructurales de una partícula viral, llamada virión, como la forma de la cápside viral y la presencia de una envoltura viral, una membrana lipídica que rodea la cápside, no tienen relación directa con los grupos de Baltimore, ni los grupos muestran necesariamente una relación genética basada en la historia evolutiva.

Clasificación
Virus de ADN
Los virus de ADN tienen genomas compuestos de ácido desoxirribonucleico (ADN) y están organizados en dos grupos: virus de ADN bicatenario (dsADN) y virus de ADN monocatenario (ssADN). Están asignados a cuatro reinos diferentes: Adnaviria, Duplodnaviria, Monodnaviria y Varidnaviria. Muchos aún no han sido asignados a un reino.
Grupo I: virus dobles de ADN
El primer grupo de Baltimore contiene virus que tienen un genoma de ADN de doble cadena (dsDNA). Todos los virus dsDNA tienen su ARNm sintetizado en un proceso de tres pasos. Primero, un complejo de preiniciación de la transcripción se une al ADN aguas arriba del sitio donde comienza la transcripción, lo que permite el reclutamiento de una ARN polimerasa del huésped. Segundo, una vez reclutada la ARN polimerasa, utiliza la cadena negativa como plantilla para sintetizar cadenas de ARNm. Tercero, la ARN polimerasa termina la transcripción al alcanzar una señal específica, como un sitio de poliadenilación.
Los virus dsDNA utilizan varios mecanismos para replicar su genoma. La replicación bidireccional, en la que dos horquillas de replicación se establecen en un sitio de origen de replicación y se mueven en direcciones opuestas entre sí, es ampliamente utilizada. Un mecanismo de círculo rodante que produce cadenas lineales mientras progresa en un bucle alrededor del genoma circular también es común. Algunos virus dsDNA utilizan un método de desplazamiento de cadena mediante el cual una cadena se sintetiza a partir de una cadena molde y luego se sintetiza una cadena complementaria a partir de la cadena sintetizada previamente, formando un genoma dsDNA. Por último, algunos virus dsDNA se replican como parte de un proceso llamado transposición replicativa mediante el cual un genoma viral en el ADN de una célula huésped se replica a otra parte de un genoma huésped.
Los virus dsDNA se pueden subdividir entre aquellos que se replican en el núcleo, y como tales dependen relativamente de la maquinaria de la célula huésped para la transcripción y replicación, y aquellos que se replican en el citoplasma, en cuyo caso han desarrollado o adquirido sus propios medios para ejecutar la transcripción y replicación. Los virus dsDNA también se dividen comúnmente entre virus dsDNA con cola, que hacen referencia a los miembros del reino Duplodnaviria, generalmente los bacteriófagos con cola del orden Caudovirales, y virus dsDNA sin cola o sin cola del reino Varidnaviria. Los virus dsDNA se clasifican en tres de los cuatro reinos e incluyen muchos taxones que no están asignados a ningún reino:- Todos los virus en Adnaviria son virus dsDNA. Viruses en este reino infect archaea.
- Todos los virus en Duplodnaviria son virus dsDNA. Los virus en este reino pertenecen a dos grupos: bacteriófagos a medida en Caudovirales y herpesvirus en Herpesvirales.
- In Monodnaaviria, miembros de la clase Papovaviricetes son virus dsDNA. Viruses en Papovaviricetes constituyen dos grupos: papilomavirus y poliomavirus.
- Todos los virus en Varidnaviria son virus dsDNA. Los virus en este reino incluyen adenovirus, virus gigantes y poxvirus.
- Los siguientes taxa que no se asignan a un reino contienen exclusivamente virus dsDNA:
- Clases: Naldaviricetes
- Familias: Ampullaviridae, Bicaudaviridae, Clavaviridae, Fuselloviridae, Globuloviridae, Guttaviridae, Halspiviridae, Ovaliviridae, Plasmaviridae, Polydnaviridae, Portogloboviridae, Thaspiviridae
- Generar: Dinodnavirus, Rhizidiovirus
Grupo II: virus de ADN de una sola banda

El segundo grupo de Baltimore contiene virus que tienen un genoma de ADN monocatenario (ssDNA). Los virus ssDNA tienen el mismo modo de transcripción que los virus dsDNA. Sin embargo, como el genoma es monocatenario, una ADN polimerasa lo convierte primero en una forma bicatenaria al entrar en una célula huésped. Luego, se sintetiza el ARNm a partir de la forma bicatenaria. La forma bicatenaria de los virus ssDNA puede producirse directamente después de entrar en una célula o como consecuencia de la replicación del genoma viral. Los virus ssDNA eucariotas se replican en el núcleo.
La mayoría de los virus ssDNA contienen genomas circulares que se replican mediante replicación en círculo rodante (RCR). La RCR del ssDNA se inicia mediante una endonucleasa que se une a la cadena positiva y la corta, lo que permite que una ADN polimerasa utilice la cadena negativa como plantilla para la replicación. La replicación progresa en un bucle alrededor del genoma mediante la extensión del extremo 3' de la cadena positiva, desplazando la cadena positiva anterior, y la endonucleasa corta la cadena positiva nuevamente para crear un genoma independiente que se liga en un bucle circular. El nuevo ssDNA puede empaquetarse en viriones o replicarse mediante una ADN polimerasa para formar una forma bicatenaria para la transcripción o la continuación del ciclo de replicación.
Los parvovirus contienen genomas de ADN monocatenario lineales que se replican mediante la replicación en horquilla rodante (RHR), que es similar a la RCR. Los genomas de los parvovirus tienen bucles de horquilla en cada extremo del genoma que se despliegan y se vuelven a plegar repetidamente durante la replicación para cambiar la dirección de la síntesis de ADN y moverse hacia adelante y hacia atrás a lo largo del genoma, produciendo numerosas copias del genoma en un proceso continuo. Luego, la endonucleasa viral escinde los genomas individuales de esta molécula. En el caso de los parvovirus, tanto la cadena de sentido positivo como la de sentido negativo pueden estar empaquetadas en cápsides, que varían de un virus a otro.
Casi todos los virus ssDNA tienen genomas de sentido positivo, pero existen algunas excepciones y peculiaridades. La familia Anelloviridae es la única familia ssDNA cuyos miembros tienen genomas de sentido negativo, que son circulares. Los parvovirus, como se mencionó anteriormente, pueden empaquetar la cadena de sentido positivo o negativo en viriones. Por último, los bidnavirus empaquetan tanto la cadena lineal positiva como la negativa. En cualquier caso, el sentido de los virus ssDNA, a diferencia de los virus ssRNA, no es suficiente para separar los virus ssDNA en dos grupos, ya que todos los genomas virales ssDNA se convierten en formas dsDNA antes de la transcripción y replicación.
Los virus ssDNA se clasifican en uno de los cuatro reinos e incluyen varias familias que no están asignadas a ningún reino:- In Monodnaaviria, todos los miembros excepto virus en Papovaviricetes son virus del SsDNA.
- Las familias no firmadas Anelloviridae y Spiraviridae son familias del virus del SsDNA.
- Viruses en la familia Finnlakeviridae contienen genomas del SsDNA. Finnlakeviridae no está asignado a un reino pero es un miembro propuesto Varidnaviria.
Virus del ARN
Los virus ARN tienen genomas compuestos de ácido ribonucleico (ARN) y comprenden tres grupos: virus ARN bicatenario (dsRNA), virus ARN monocatenario de sentido positivo (+ssRNA) y virus ARN monocatenario de sentido negativo (-ssRNA). La mayoría de los virus ARN se clasifican en el reino Orthornavirae, en el reino Riboviria. Las excepciones son generalmente los viroides y otros agentes subvirales. Algunos de esta última categoría, como el virus de la hepatitis D, se clasifican en el reino Ribozyviria.
Grupo III: virus de ARN dobles

El tercer grupo de Baltimore contiene virus que tienen un genoma de ARN bicatenario (dsRNA). Después de entrar en una célula huésped, el genoma de dsRNA se transcribe a ARNm a partir de la cadena negativa por la ARN polimerasa dependiente del ARN viral (RdRp). El ARNm puede usarse para la traducción o la replicación. El ARNm monocatenario se replica para formar el genoma de dsRNA. El extremo 5' del genoma puede estar desnudo, cubierto o unido covalentemente a una proteína viral.
El dsRNA no es una molécula fabricada por células, por lo que la vida celular ha desarrollado sistemas antivirales para detectar e inactivar el dsRNA viral. Para contrarrestar esto, muchos genomas de dsRNA se construyen dentro de cápsides, evitando así la detección dentro del citoplasma de la célula huésped. El ARNm es expulsado de la cápside para ser traducido o translocado de una cápside madura a una cápside de progenie. Si bien los virus dsRNA suelen tener cápsides, no se ha observado que los virus de las familias Amalgaviridae y Endornaviridae formen viriones y, como tal, aparentemente carecen de cápsides. Los endornavirus también son inusuales en el sentido de que, a diferencia de otros virus de ARN, poseen un único marco de lectura abierto (ORF) largo, o porción traducible, y una muesca específica del sitio en la región 5′ de la cadena positiva.
Los virus dsRNA se clasifican en dos filos dentro del reino Orthornavirae del reino Riboviria:- Todos los virus en Duplornaviricota son virus dsRNA.
- In Pisuviricota, todos los miembros de la clase Duplopiviricetes son virus dsRNA.
Group IV: positive sense single-stranded RNA viruses

El cuarto grupo de Baltimore contiene virus que tienen un genoma de ARN monocatenario de sentido positivo (+ssRNA). En el caso de los virus +ssRNA, el genoma funciona como ARN mensajero, por lo que no se requiere transcripción para la traducción. Sin embargo, los virus +ssRNA también producirán copias de sentido positivo del genoma a partir de cadenas de sentido negativo de un genoma de dsRNA intermedio. Esto actúa como un proceso de transcripción y replicación, ya que el ARN replicado también es ARN mensajero. El extremo 5' puede estar desnudo, cubierto o unido covalentemente a una proteína viral, y el extremo 3' puede estar desnudo o poliadenilado.
Muchos virus +ssRNA son capaces de transcribir solo una parte de su genoma. Normalmente, las cadenas de ARN subgenómico (sgRNA) se utilizan para la traducción de proteínas estructurales y de movimiento necesarias durante las etapas intermedias y tardías de la infección. La transcripción de sgRNA puede ocurrir al iniciar la síntesis de ARN dentro del genoma en lugar de hacerlo desde el extremo 5', al detener la síntesis de ARN en secuencias específicas del genoma o, como parte de los dos métodos anteriores, al sintetizar secuencias líderes a partir del ARN viral que luego se unen a las cadenas de sgRNA. Debido a que la replicación es necesaria para la síntesis de sgRNA, RdRp siempre se traduce primero.
Dado que el proceso de replicación del genoma viral produce moléculas intermedias de ARN de doble cadena, los virus de ARN monocatenario pueden ser el blanco del sistema inmunitario de la célula huésped. Para evitar ser detectados, los virus de ARN monocatenario se replican en vesículas asociadas a la membrana que se utilizan como fábricas de replicación. Desde allí, solo el ARN monocatenario viral, que puede ser ARN mensajero, ingresa al área citoplasmática principal de la célula.
Los virus +ssRNA se pueden subdividir entre aquellos que tienen ARNm policistrónico, que codifica una poliproteína que se escinde para formar múltiples proteínas maduras, y aquellos que producen ARNm subgenómicos y, por lo tanto, experimentan dos o más rondas de traducción. Los virus +ssRNA se incluyen en tres filos en el reino Orthornavirae en el reino Riboviria:- Todos los virus en Lenarviricota son virus +ssRNA.
- Todos los virus en Pisuviricota son +ssRNA virus, excluyendo la clase Duplopiviricetes, cuyos miembros tienen genomas dsRNA.
- Todos los virus en Kitrinoviricota son virus +ssRNA.
Group V: negative sense single-stranded RNA viruses
El quinto grupo de Baltimore contiene virus que tienen un genoma de ARN monocatenario de sentido negativo (-ssRNA). El ARNm, que es de sentido positivo, se transcribe directamente a partir del genoma de sentido negativo. El primer proceso para la transcripción del -ssRNA implica la unión de RdRp a una secuencia líder en el extremo 3' del genoma, transcribiendo un ARN líder trifosfato 5' que está protegido, luego deteniéndose y reiniciándose en una señal de transcripción que está protegida, continuando hasta que se alcanza una señal de parada. El segundo método es similar, pero en lugar de sintetizar un protector, RdRp puede hacer uso del robo de protector, por el cual se toma una secuencia corta de ARNm de la célula huésped y se utiliza como protector 5' del ARNm viral. El -ssRNA genómico se replica a partir del antígeno de sentido positivo de una manera similar a la transcripción, excepto que a la inversa, utilizando el antígeno como plantilla para el genoma. RdRp se mueve desde el extremo 3′ al extremo 5′ del antígeno e ignora todas las señales de transcripción al sintetizar el ARN monocatenario genómico.
Varios virus -ssRNA utilizan mecanismos especiales para la transcripción. La forma de producir la cola de poliA puede ser mediante el tartamudeo de la polimerasa, durante el cual RdRp transcribe una adenina del uracilo y luego retrocede en la secuencia de ARN con el ARNm para transcribirlo nuevamente, continuando este proceso numerosas veces hasta que se hayan agregado cientos de adeninas al extremo 3' del ARNm. Además, algunos virus -ssRNA son ambisense, ya que tanto la cadena positiva como la negativa codifican por separado las proteínas virales, y estos virus producen dos cadenas de ARNm separadas: una directamente del genoma y otra a partir de una cadena complementaria.
Los virus de ARN monocatenario se pueden subdividir informalmente entre aquellos que tienen genomas no segmentados y segmentados. Los virus de ARN monocatenario no segmentados se replican en el citoplasma, y los virus de ARN monocatenario segmentados se replican en el núcleo. Durante la transcripción, la RdRp produce una cadena de ARNm monocistrónica de cada segmento del genoma. Todos los virus de ARN monocatenario se clasifican en el filo Negarnaviricota en el reino Orthornavirae del reino Riboviria. Negarnaviricota solo contiene virus de ARN monocatenario, por lo que "virus de ARN monocatenario" es sinónimo de Negarnaviricota. Negarnaviricota se divide en dos subfilos: Haploviricotina, cuyos miembros sintetizan una estructura de capuchón en el ARNm viral necesaria para la síntesis de proteínas, y Polyploviricotina, cuyos miembros obtienen capuchones en el ARNm mediante el robo de capuchones.Virus de transcripción inversa
Los virus de transcripción inversa (RT) tienen genomas compuestos de ADN o ARN y se replican mediante transcripción inversa. Existen dos grupos de virus de transcripción inversa: los virus de transcripción inversa de ARN monocatenario (ssRNA-RT) y los virus de transcripción inversa de ADN bicatenario (dsDNA-RT). Los virus de transcripción inversa se clasifican en el reino Pararnavirae, dentro del reino Riboviria.
Grupo VI: virus de ARN monoplazados con un ADN intermedio
El sexto grupo de Baltimore contiene virus que tienen un genoma de ARN monocatenario (de sentido positivo) que tiene un intermediario de ADN ((+)ssRNA-RT) en su ciclo de replicación. Los virus ssRNA-RT se transcriben de la misma manera que los virus de ADN, pero sus genomas lineales primero se convierten en una forma dsADN a través de un proceso llamado transcripción inversa. La enzima transcriptasa inversa viral sintetiza una cadena de ADN a partir de la cadena ssRNA, y la cadena de ARN se degrada y se reemplaza con una cadena de ADN para crear un genoma dsADN. Luego, el genoma se integra en el ADN de la célula huésped, donde ahora se llama provirus. Luego, la ARN polimerasa II de la célula huésped transcribe el ARN en el núcleo a partir del ADN proviral. Parte de este ARN puede convertirse en ARNm, mientras que otras cadenas se convertirán en copias del genoma viral para la replicación.
Todos los virus ssRNA-RT pertenecen a la clase Revtraviricetes, filo Arterviricota, reino Pararnavirae del reino Riboviria. Exceptuando a Caulimoviridae, que pertenece al Grupo VII, todos los miembros del orden Ortervirales de Revtraviricetes son virus ssRNA-RT.
Grupo VII: virus de ADN dobles con un ARN intermedio
El séptimo grupo de Baltimore contiene virus que tienen un genoma de ADN de doble cadena que tiene un ARN intermedio (dsDNA-RT) en su ciclo de replicación. Los virus dsDNA-RT tienen un hueco en una cadena, que se repara para crear un genoma dsDNA completo antes de la transcripción. Los virus dsDNA-RT se transcriben de la misma manera que los virus dsDNA, pero utilizan la transcripción inversa para replicar su genoma circular mientras aún está en la cápside. La ARN polimerasa II de la célula huésped transcribe cadenas de ARN del genoma en el citoplasma, y el genoma se replica a partir de estas cadenas de ARN. El genoma dsDNA se produce a partir de cadenas de ARN pregenómicas a través del mismo mecanismo general que los virus ssRNA-RT, pero la replicación se produce en un bucle alrededor del genoma circular. Después de la replicación, el genoma dsDNA puede empaquetarse o enviarse al núcleo para más rondas de transcripción.
Los virus dsDNA-RT, al igual que los ssRNA-RT, pertenecen a la clase Revtraviricetes. Se reconocen dos familias de virus dsDNA-RT: Caulimoviridae, que pertenece al orden Ortervirales, y Hepadnaviridae, que es la única familia del orden Blubervirales.
Características multigrupo

Varias características de los virus no están directamente asociadas con la clasificación de Baltimore, pero sin embargo corresponden estrechamente a múltiples grupos específicos de Baltimore. Esto incluye el empalme alternativo durante la transcripción, si el genoma viral está segmentado, la gama de hospedadores de los virus, si el genoma es lineal o circular y diferentes métodos de traducción del ARNm viral.
Espolvo alternativo
El splicing alternativo es un mecanismo por el cual se pueden producir diferentes proteínas a partir de un único gen mediante el uso de sitios de splicing alternativo para producir diferentes ARNm. Se encuentra en varios virus de transcripción inversa, de ADN y de ssRNA. Los virus pueden hacer uso del splicing alternativo únicamente para producir múltiples proteínas a partir de una única cadena de pre-ARNm o para otros fines específicos. Para ciertos virus, incluidas las familias Orthomyxoviridae y Papillomaviridae, el splicing alternativo actúa como una forma de regular la expresión génica temprana y tardía durante diferentes etapas de la infección. Los herpesvirus lo utilizan como un posible mecanismo de defensa antihuésped para evitar la síntesis de proteínas antivirales específicas. Además del splicing alternativo, debido a que el ARN celular no empalmado no puede ser transportado fuera del núcleo, los hepadnavirus y los retrovirus contienen sus propias proteínas para exportar su ARN genómico no empalmado fuera del núcleo.
segmentación del genoma
Los genomas virales pueden existir en un segmento único o monopartito, o pueden estar divididos en más de una molécula, lo que se denomina multipartito. En el caso de los virus monopartitos, todos los genes se encuentran en un único segmento del genoma. Los virus multipartitos suelen empaquetar sus genomas en un único virión, de modo que todo el genoma se encuentra en una partícula viral y los segmentos separados contienen genes diferentes. Los virus monopartitos se encuentran en todos los grupos de Baltimore, mientras que los virus multipartitos suelen ser virus de ARN. Esto se debe a que la mayoría de los virus multipartitos infectan plantas u hongos, que son eucariotas, y la mayoría de los virus eucariotas son virus de ARN. La familia Pleolipoviridae varía, ya que algunos virus son monopartitos de ssDNA, mientras que otros son bipartitos, con un segmento de ssDNA y el otro de dsDNA. Los virus de la familia de virus de plantas de ssDNA Geminiviridae también varían entre monopartitos y bipartitos.
Catálogo
Los diferentes grupos de Baltimore tienden a encontrarse dentro de diferentes ramas de la vida celular. En los procariotas, la gran mayoría de los virus son virus dsADN, y una minoría significativa son virus ssADN. Los virus ARN procariotas, en cambio, son relativamente raros. La mayoría de los virus eucariotas, incluidos la mayoría de los virus animales y vegetales, son virus ARN, aunque los virus ADN eucariotas también son comunes. Por grupo, la gran mayoría de los virus dsADN infectan a los procariotas, los virus ssADN se encuentran en los tres dominios de la vida, los virus dsARN y +ssARN se encuentran principalmente en eucariotas pero también en bacterias, y los virus -ssARN y de transcripción inversa solo se encuentran en eucariotas.
Genomas lineales v circulares
Los genomas virales pueden ser lineales con extremos o circulares en un bucle. El hecho de que un virus tenga un genoma lineal o circular varía de un grupo a otro. Un porcentaje significativo de virus dsADN son ambos, los virus ssADN son principalmente circulares, los virus ARN y los virus ssARN-RT son típicamente lineales, y los virus dsADN-RT son típicamente circulares. En la familia dsADN Sphaerolipoviridae, y en la familia Pleolipoviridae, los virus contienen genomas tanto lineales como circulares, que varían de un género a otro.
Edición de ARN
Varios virus ssRNA utilizan la edición de ARN para producir diferentes proteínas a partir de un único gen. Esto se puede hacer mediante el deslizamiento de la polimerasa durante la transcripción o mediante edición postranscripcional. En el deslizamiento de la polimerasa, la ARN polimerasa desliza un nucleótido hacia atrás durante la transcripción, insertando un nucleótido que no está incluido en la cadena molde. La edición de una cadena molde genómica perjudicaría la expresión génica, por lo que la edición de ARN solo se realiza durante y después de la transcripción. En el caso de los virus del ébola, la edición de ARN mejora la capacidad de adaptación a sus huéspedes.
El splicing alternativo se diferencia de la edición de ARN en que el splicing alternativo no cambia la secuencia de ARNm como la edición de ARN, sino que cambia la capacidad de codificación de una secuencia de ARNm como resultado de los sitios de splicing alternativo. Por lo demás, los dos mecanismos tienen el mismo resultado: se expresan múltiples proteínas a partir de un único gen.
Traducción

La traducción es el proceso mediante el cual los ribosomas sintetizan proteínas a partir del ARNm. Los grupos de Baltimore no están directamente relacionados con la traducción de las proteínas virales, pero dentro de los grupos de Baltimore específicos se encuentran varios tipos atípicos de traducción utilizados por los virus:
- Traducción no canónica iniciación:
- Iniciación Viral de la traducción: utilizado principalmente por +ssRNA y ssRNA-RT virus, varios virus han evolucionado mecanismos para iniciar la traducción, tales como tener sitios de entrada ribosomal interna para permitir la traducción cap-independiente, teniendo lazo de horquillas de abajo que permiten la traducción cap-dependiente en ausencia de un factor de iniciación eIF2, y la iniciación en un CUG u otro codón de inicio con un aminoácido de leucina.
- Escaneo de plomo: utilizado por varios virus en todos los grupos de Baltimore, la subunidad ribosomal 40S puede escanear a través de un codón de inicio, saltando así un ORF, sólo iniciando la traducción con la subunidad 60S en un codón de inicio posterior.
- Deslumbramiento ribosomal: utilizado por varios dsDNA, +ssRNA, -ssRNA, ssRNA-RT, un dsDNA-RT virus, ribosomas comenzarán a escanear desde una estructura de 5 "cap y luego pasar por una estructura de líder en el mRNA, traducción de iniciación aguas abajo de la secuencia de líder.
- Termination-reinitiation: used by some dsRNA and +ssRNA virus, ribosomes may translate an ORF, but following termination of translation of that ORF, a proportion of 40S subunits of the ribosome remain attached to the mRNA as a way to reinitiate translation of a subsequent ORF.
- Elongación no canónica y terminación de la traducción:
- Desplazamiento de marcos costosomal: utilizado por varios virus dsDNA, dsRNA, +ssRNA y ssRNA-RT, produce proteínas fusionadas de ORFs superpuestos. Esto se ejecuta simplemente por ribosomas deslizando un núcleo hacia adelante o hacia atrás durante la traducción.
- Represión de la terminación: también llamada readthrough stop-codon, utilizado por varios dsRNA, +ssRNA, y ssRNA-RT virus, ciertos virus contienen codones en su mRNA que normalmente indicarían la terminación de la traducción al ser reconocido por un factor de liberación, pero son en su lugar parcialmente reconocidos por tRNA durante la traducción, que permite la traducción continua hasta el codón de la próxima parada para producir un extremo prolongado de la proteína viral. En los virus, esto se utiliza a menudo para expresar enzimas réplicas.
- Esquiamiento ribosomal: también llamado stop-carry on, utilizado por varios virus dsRNA y +ssRNA, un péptido viral o secuencia de aminoácidos, puede evitar que un ribosoma vincule covalentemente un nuevo aminoácido insertado, que bloquea la traducción adicional. En consecuencia, la poliproteína es lisa co-translacionalmente, y se inicia una nueva secuencia de aminoácidos, que conduce a la producción de dos proteínas individuales de una ORF.
Historia

La clasificación de Baltimore fue propuesta en 1971 por el virólogo David Baltimore en un artículo titulado Expresión de genomas de virus animales. Inicialmente contenía los primeros seis grupos, pero luego se amplió para incluir el grupo VII. Debido a la utilidad de la clasificación de Baltimore, se la ha utilizado junto con la taxonomía estándar de virus, que se basa en relaciones evolutivas y está regida por el Comité Internacional de Taxonomía de Virus (ICTV).
Desde los años 1990 hasta los años 2010, la taxonomía de los virus utilizó un sistema de cinco rangos que abarcaba desde el orden hasta la especie, junto con la clasificación de Baltimore. Fuera del marco oficial del ICTV, se crearon con el tiempo varios supergrupos de virus que unían diferentes familias y órdenes basándose en la evidencia creciente de relaciones evolutivas más profundas. En consecuencia, en 2016, el ICTV comenzó a considerar el establecimiento de rangos superiores al orden, así como la forma en que se tratarían los grupos de Baltimore entre los taxones superiores.
En dos votaciones en 2018 y 2019, el ICTV estableció un sistema de 15 rangos que van desde el reino hasta la especie. Como parte de esto, los grupos Baltimore para virus de ARN y virus RT se incorporaron a taxones formales. En 2018, se estableció el reino Riboviria e inicialmente incluyó los tres grupos de virus de ARN. Un año después, Riboviria se amplió para incluir también ambos grupos RT. Dentro del reino, los virus RT están incluidos en el reino Pararnavirae y los virus de ARN en el reino Orthornavirae. Además, los tres grupos Baltimore para virus de ARN se utilizan como características definitorias de los filos en Orthornavirae.
A diferencia de los virus ARN y los virus RT, los virus ADN no se han unido en un único reino, sino que están dispersos en cuatro reinos y varios taxones que no están asignados a un reino. Los reinos Adnaviria y Duplodnaviria contienen exclusivamente virus dsADN, Monodnaviria contiene principalmente virus ssADN pero también contiene virus dsADN, y Varidnaviria contiene exclusivamente virus dsADN, aunque algunos miembros propuestos de Varidnaviria, a saber, la familia Finnlakeviridae, son virus ssADN.
Notas explicativas
- ^ ssRNA-RT virus son a menudo llamados retrovirus, aunque este término también se utiliza para referirse a cualquier virus transcribiendo inversa, así como específicamente a virus en la familia ssRNA-RT Retroviridae.
Referencias
Citaciones
- ^ a b Lostroh 2019, págs. 11 a 13.
- ^ a b c d "Replicación vitral/transcripción/traducción". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ a b c d e f Cann 2015, págs. 122 a 127.
- ^ "dsDNA transcripción de plantilla". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ Rampersad " Tennant 2018, p. 66.
- ^ a b c Fermin 2018, págs. 36 a 40.
- ^ "dsDNA réplica bidireccional". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ "Replicación del círculo rodante de ADN". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ "Replicación de desplazamiento de cadenas DNA". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ "Transposición replicativa". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ a b c Koonin EV, Dolja VV, Krupovic M, Varsani A, Wolf YI, Yutin N, Zerbini M, Kuhn JH (18 de octubre de 2019). "Crear un marco megataxonómico, llenando todas las categorías taxonómicas principales/primarias, para los virus dsDNA encodificando proteínas capsidas principales tipo HK97" (docx). International Committee on Taxonomy of Viruses. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ a b c d e Koonin EV, Dolja VV, Krupovic M, Varsani A, Wolf YI, Yutin N, Zerbini M, Kuhn JH (18 de octubre de 2019). "Crear un marco megataxonómico, llenando todas las principales filas taxonómicas, para los virus del ADN encodificando proteínas capsidas principales de tipo jalea vertical" (docx). International Committee on Taxonomy of Viruses. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ a b Krupovic M, Kuhn JH, Wang F, Baquero DP, Egelman EH, Koonin EV, Prangishvili D (31 de julio de 2020). "Crear un nuevo reino (Adnaviria) para la clasificación de virus filamentosos arqueales con genomas lineales dsDNA" (docx). International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV). Retrieved 27 de mayo 2021.
- ^ a b c d Koonin EV, Dolja VV, Krupovic M, Varsani A, Wolf YI, Yutin N, Zerbini M, Kuhn JH (18 de octubre de 2019). "Crear un marco megataxonomic, llenando todas las principales filas taxonómicas, para los virus del SsDNA" (docx). International Committee on Taxonomy of Viruses. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ Harrison RL, Herniou EA, Jehle JA, Theilmann DA, Burand JP, Krell PJ, van Oers MM (28 de agosto de 2020). "Crear una nueva clase (Naldaviricetes) incluyendo un nuevo orden (Lefavirales) para cuatro familias de virus de ADN grandes específicos de artrópodos" (docx). International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV). Retrieved 27 de mayo 2021.
- ^ a b "SsDNA Rolling circle". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ a b "Rolling hairpin replication". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ a b c Fermin 2018, pp. 40–41.
- ^ a b Rampersad " Tennant 2018, pp. 61–62.
- ^ Kerr J, Cotmore S, Bloom ME (25 de noviembre de 2005). Parvoviruses. CRC Press. pp. 171–185. ISBN 9781444114782.
- ^ "Bidnaviridae". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ a b "Replicación del virus del ARN doble". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ a b c d Rampersad " Tennant 2018, p. 65.
- ^ a b Fermin 2018, p. 42.
- ^ a b c d e f Koonin EV, Dolja VV, Krupovic M, Varsani A, Wolf YI, Yutin N, Zerbini M, Kuhn JH (18 de octubre de 2019). "Crea un marco megataxonomic, llenando todas las principales filas taxonómicas, para el reino Riboviria" (docx). International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV). Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ a b "Replicación del virus del ARN tirado positivo". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ a b c Rampersad " Tennant 2018, págs. 64 a 65.
- ^ a b Fermin 2018, pp. 43–44.
- ^ "Trascripción subjetiva del ARN". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ Cann 2015, pp. 151–154.
- ^ "La transcripción del virus del ARN con tendencia negativa". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ "Cap snatching". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ "Replicación del virus del ARN hebrado negativo". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ "Estuttering de polimerasa del virus del ARN nervioso negativo". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ "Trascripción ambisense en virus de ARN varados negativos". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ Cann 2015, pp. 154–156.
- ^ a b c d Fermin 2018, págs. 45 a 46.
- ^ Kuhn JH, Wolf YI, Krupovic M, Zhang YZ, Maes P, Dolja VV, Koonin EV (Febrero 2019). "Clasificar virus - la ganancia vale la pena" (PDF). Naturaleza. 566 (7744): 318-320. Código:2019Natur.566..318K doi:10.1038/d41586-019-00599-8. PMID 30787460. S2CID 67769904. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ a b Rampersad " Tennant 2018, págs. 63 a 64.
- ^ "ssRNA(RT) réplica/transcripción". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ Cann 2015, p. 156.
- ^ a b Krupovic M, Blomberg J, Coffin JM, Dasgupta I, Fan H, Geering AD, Gifford R, Harrach B, Hull R, Johnson W, Kreuze JF, Lindemann D, Llorens C, Lockhart B, Mayer J, Muller E, Olszewski NE, Pappu HR, Pooggin MM, Richzoer JE, Seal S, Stavolone L, Stoye JP, Teycheney PY, Tristem M, Koonin EV, Kuhn JH (15 de junio de 2018). "Ortervirales: New Virus Order Unifying Five Families of Invers-Transcribing Viruses". J Virol. 92 (12): e00515–e00518. doi:10.1128/JVI.00515-18. PMC 5974489. PMID 29618642.
- ^ "dsDNA(RT) replication/transcription". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ "Aspiración alternativa". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ a b c Rampersad " Tennant 2018, págs. 71 a 72.
- ^ a b Koonin EV, Dolja VV, Krupovic M (mayo de 2015). "Originas y Evolución de Virus de Eukaryotes: La Modularidad Última". Virología. 479: 2–25. doi:10.1016/j.virol.2015.02.039. PMC 5898234. PMID 25771806.
- ^ a b c Fermin 2018, págs. 35 a 46.
- ^ Sicard A, Michalakis Y, Gutiérrez S, Blanc S (3 de noviembre de 2016). "El estilo de vida extraño de los virus multipartitos". PLOS Pathog. 12 (11): e1005819. doi:10.1371/journal.ppat.1005819. PMC 5094692. PMID 27812219.
- ^ a b Bamford DH, Pietilä MK, Roine E, Atanasova NS, Dienstbier A, Oksanen HM (diciembre de 2017). "ICTV Virus Taxonomy Profile: Pleolipoviridae". J Gen Virol. 98 (12): 2916–2917. doi:10.1099/jgv.0.000972. PMC 5882103. PMID 29125455. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ "Geminiviridae". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ Wolf YI, Kazlauskas D, Iranzo J, Lucia-Sanz A, Kuhn JH, Krupovic M, Dolja VV, Kooning EV (27 de noviembre de 2018). "Originos y Evolución del Virome del ARN Global". m Bio. 9 (6): e02329-18. doi:10.1128/mBio.02329-18. PMC 6282212. PMID 30482837.
- ^ Yu C, Hernández T, Zheng H, Yau SC, Huang HH, He RL, Yang J, Yau SS (22 de mayo de 2013). "Clasificación del tiempo real de los virus en 12 dimensiones". PLOS ONE. 8 (5): e64328. Bibcode:2013PLoSO...864328Y. doi:10.1371/journal.pone.0064328. PMC 3661469. PMID 23717598.
- ^ "Doble virus de ADN de cadena". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
"Single strand DNA viruss". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
"Problemas dobles de ARN". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
"Positive strand RNA virus". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
"Los virus del ARN del hilo negativo". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
"Virus reversas transcribiendo". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020. - ^ "Sphaerolipoviridae". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ "RNA editing". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ Firth AE, Brierley I (Julio 2012). "Traducción no canónica en virus del ARN". J Gen Virol. 9 (Pt 7): 1385–1409. doi:10.1099/vir.0.042499-0. PMC 3542737. PMID 22535777.
- ^ "Iniciación real de la traducción". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ Rampersad " Tennant 2018, págs. 69 a 70.
- ^ "Escaneo débil". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ a b Rampersad " Tennant 2018, págs. 73 a 74.
- ^ "Blanco cerebral". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ a b Rampersad " Tennant 2018, págs. 74 a 75.
- ^ "RNA-reinitiation". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ "Ribosomal frameshifting". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ "Represión del ARN de terminación". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ Rampersad " Tennant 2018, págs. 72 a 73.
- ^ "Esquivación cerebral". ViralZone. Swiss Institute of Bioinformatics. Retrieved 6 de agosto 2020.
- ^ Baltimore D (1971). "Expresión de genomas de virus animales". Bacteriol Rev. 35 (3): 235–241. doi:10.1128/MMBR.35.3.235-241.1971. PMC 378387. PMID 4329869.
- ^ a b c d International Committee on Taxonomy of Viruses Executive Committee (May 2020). "El Nuevo Ámbito de Taxonomía de Virus: Partitioning the Virosphere Into 15 Ranks jerárquicos". Nat Microbiol. 5 (5): 668–674. doi:10.1038/s41564-020-0709-x. PMC 7186216. PMID 32341570.
- ^ Gorbalenya, Alexander E.; Krupovic, Mart; Siddell, Stuart; Varsani, Arvind; Kuhn, Jens H. (15 de octubre de 2018). "Riboviria: establecer un único taxón que comprende virus del ARN en el rango basal de taxonomía del virus" (docx). International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV). Retrieved 6 de agosto 2020.
Bibliografía general
- Cann, A. (2015). Principios de Virología Molecular. Elsevier. pp. 122-127. ISBN 978-0128019559.
- Fermin, G. (2018). Virus: Biología molecular, interacciones anfitrionas y aplicaciones a la biotecnología. Elsevier. pp. 35–46. doi:10.1016/B978-0-12-811257-1.00002-4. ISBN 978-0128112571. S2CID 89706800.
- Lostroh, P. (2019). Biología molecular y celular de los virus. Ciencias Garland. ISBN 978-0429664304.
- Rampersad, S.; Tennant, P. (2018). Virus: Biología molecular, interacciones anfitrionas y aplicaciones a la biotecnología. Elsevier. pp. 55–82. doi:10.1016/B978-0-12-811257-1.00003-6. ISBN 978-0128112571. S2CID 90170103.