Babesia

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Babesia, también llamada Nuttallia, es un parásito apicomplejo que infecta los glóbulos rojos y se transmite por garrapatas. Descubierta originalmente por el bacteriólogo rumano Victor Babeș en 1888, desde entonces se han identificado más de 100 especies de Babesia.

Babesia comprende más de 100 especies de parásitos transmitidos por garrapatas que infectan los eritrocitos (glóbulos rojos) en muchos hospedadores vertebrados.

Las especies de Babesia infectan al ganado en todo el mundo, a los animales vertebrados salvajes y domésticos y, ocasionalmente, a los seres humanos, donde causan la enfermedad babesiosis. En los Estados Unidos, B. microti es la cepa más común de las pocas que se ha documentado que causan enfermedades en los seres humanos.

Clasificación

Piroplasmida phylogeny (mtDNA)
Piroplasmida

Babesia s.s.

Theileriidae

Theileria s.s.

Cytauxzoon

Theileria equi

Babesia conradae

Babesia microti

B. bovis transmisión

Babesia es un parásito protozoario que infecta a los animales vertebrados, principalmente mamíferos y aves, pero también ocasionalmente a los seres humanos. Los nombres comunes de la enfermedad que causa Babesia microti son fiebre del ganado de Texas, fiebre de Redwater, fiebre de garrapatas y fiebre de Nantucket. La enfermedad que causa en los seres humanos, la babesiosis, también se llama piroplasmosis.

Babesia microti, sin embargo, no forma parte del género Babesia. Debido a clasificaciones históricas erróneas, el protozoo ha sido etiquetado con muchos nombres, incluido Nuttallia, y se le cambió el nombre de Babesia microti a Theileria microti según evidencia de 2006. Su secuencia genética, publicada en 2012, muestra que la especie no pertenece ni a Babesia ni a Theileria, sino a un género separado. Otro grupo "occidental" también está separado del género principal Babesia.

Las especies de aves Babesia se caracterizan por tener formas anulares y ameboides, y esquizontes en forma de abanico o cruciformes (en forma de cruz). Solo se han reportado parásitos en desarrollo en glóbulos rojos.

Historia

Durante siglos, se supo que esta enfermedad era grave para los animales salvajes y domésticos, especialmente el ganado vacuno. En 1888, Victor Babeș identificó por primera vez el agente causal en Rumania y creyó que se debía a la bacteria que denominó Haematococcus bovis. Documentó la enfermedad describiendo los síntomas de una enfermedad hemolítica grave que se observaba únicamente en el ganado vacuno y las ovejas.

En 1893, los estadounidenses Theobald Smith y Fred Kilborne identificaron al parásito como causante de la fiebre bovina de Texas, la misma enfermedad descrita por Babeș. También identificaron a la garrapata como agente transmisor, un descubrimiento que introdujo por primera vez el concepto de artrópodos que funcionan como vectores de enfermedades.

Se creía que era una enfermedad que sólo afectaba a los mamíferos no humanos, pero en 1957 se observó el primer caso de babesiosis en un ser humano. La persona había sido esplenectomizada, como todas las personas diagnosticadas con babesiosis hasta 1969, cuando se diagnosticó el primer caso de babesiosis en una persona que aún tenía el bazo. Esto demostró que el parásito era un patógeno potencial en cualquier persona.

Genética

Babesia muestra especificidad de hospedador, lo que permite que surjan muchas subespecies diferentes de Babesia, cada una infectando a un tipo diferente de organismo vertebrado. Si bien B. bovis y Babesia bigemina prefieren infectar al ganado en ambientes tropicales, pueden infectar a otros animales, como el venado de cola blanca. Por lo tanto, si bien el organismo tiene la capacidad de mostrar especificidad de hospedador y, por lo tanto, aumentar la efectividad de la transmisión, aún puede infectar a una variedad de hospedadores. Lo logra a través de mutaciones y selección natural. En diferentes ambientes, los protozoos individuales pueden desarrollar mutaciones que, cuando aumentan la aptitud del protozoo, permiten que la población aumente su número. Esta especificidad explica por qué Babesia tiene una diversidad genética tan grande.

Babesia persiste egoístamente a largo plazo en el sistema del huésped: el huésped no obtiene ningún beneficio de la invasión del parásito y sólo sufre. Esto permite al parásito explotar todos los recursos que ofrece el huésped, aumentar en número y aumentar la tasa de transmisión. Una infección demasiado letal resulta en la muerte del huésped y el parásito no puede propagarse, lo que es una pérdida desde un punto de vista evolutivo. Diferentes especies de Babesia son capaces de soportar el estrés del sistema inmunológico del huésped. La infección normalmente estimula el sistema inmunológico innato y no el sistema inmunológico humoral. Esto da como resultado el control de la infección, pero también la persistencia y no la eliminación del parásito.

Genómica

Se ha secuenciado el genoma de B. microti y se ha demostrado que la especie no pertenece ni a Babesia ni a Theileria, sino a un género separado. A partir de 2013, se sabe que el genoma mitocondrial es lineal como otros genomas mitocondriales de Apicomplexa secuenciados, aunque inicialmente se informó que era circular.

La secuenciación parcial del ARN de los piroplasmas caninos ha permitido identificar una serie de especies adicionales.

Ciclo de vida

El ciclo de vida de B. microti, que es típico de los parásitos del género, requiere una etapa biológica en un huésped roedor o ciervo. Se transmite por garrapatas de la familia Ixodidae entre estos huéspedes. Para empezar, la garrapata, como huésped definitivo, se infecta a sí misma, ya que absorbe gametocitos cuando se adhiere a ellos para alimentarse de sangre. También introduce la Babesia en el huésped intermediario (por ejemplo, el ganado) al alimentarse de sangre. A medida que la Babesia ingresa en los glóbulos rojos (eritrocitos) del animal, se denominan esporozoitos. Dentro del glóbulo rojo, los protozoos se vuelven cíclicos y se desarrollan en un anillo de trofozoitos. Los trofozoitos mudan a merozoitos, que tienen una estructura de tétrada denominada forma de cruz de Malta. El crecimiento de los trofozoítos y merozoítos rompe el eritrocito huésped, lo que lleva a la liberación de vermículas, los cuerpos parasitarios infecciosos, que propagan rápidamente los protozoos por la sangre. En lugar de producir cada vez más trofozoítos, algunos de los merozoítos producen gametocitos. Los gametos se fertilizan en el intestino de la garrapata y se convierten en esporozoítos en las glándulas salivales. Estos son los esporozoítos que la garrapata infectada introduce cuando pica a un huésped intermediario. Incluso como huésped incidental, los cambios de fase que ocurren en el parásito son los mismos en los seres humanos que en los huéspedes biológicos. La Babesia se puede diagnosticar en la etapa de trofozoíto y también se puede transmitir de persona a persona a través de la garrapata vectora, a través de transfusiones de sangre o por transmisión congénita (de una madre infectada a su bebé).

Ciclo de vida Babesia

Estacionalidad

Temperatura

El clima frío interrumpe por completo la transmisión. Se ha descubierto que la aparición de enfermedades transmitidas por garrapatas coincide con el cambio climático. No se sabe si la correlación entre el cambio climático y la incidencia de enfermedades transmitidas por garrapatas es lo suficientemente fuerte como para considerarse un factor importante.

Humedad

La humedad elevada y las precipitaciones favorecen la aparición de garrapatas portadoras de Babesia. Esto puede explicar por qué ha aumentado la infección por B. bigemina en el ganado de la región montañosa de Meghalaya. La esperanza de vida y el número de generaciones de Babesia microplus se correlacionan con el aumento de la longevidad de las larvas y el número de generaciones anuales. El clima cálido y seco interfiere en el ciclo de vida de Babesia dentro de la garrapata. El clima cálido y húmedo aumenta la intensidad de la infestación: la población puede prosperar debido al entorno relativamente fluido que hace que el agua y los nutrientes sean más accesibles.

Transmisión

Las especies de Babesia se transmiten a través de la saliva de una garrapata cuando pica. Ya en su etapa de ninfa, una garrapata pica en la piel para alimentarse de sangre. La garrapata, si no se quita, permanece adherida durante tres o cuatro días, y los períodos más largos de alimentación se asocian con una mayor probabilidad de contraer el parásito. El parásito puede sobrevivir en la garrapata mientras muda a través de sus diversas etapas de desarrollo, lo que hace que todas las etapas de la garrapata sean potencialmente infecciosas. Algunas especies de Babesia pueden transmitirse de una garrapata hembra a su descendencia antes de migrar a las glándulas salivales para alimentarse. No se ha demostrado que B. microti, la especie más común en humanos, se transmita transováricamente.

Las garrapatas de los animales domésticos que transmiten Babesia y causan muchas enfermedades incluyen las garrapatas del ganado, muy extendidas, Rhipicephalus (Boophilus) microplus y R.(B.) decoloratus. Estas garrapatas tienen un ciclo de alimentación monohuésped estricto en el ganado, por lo que la Babesia solo puede transmitirse por vía transovárica.

En América, el vector más común es Ixodes scapularis. Esta garrapata dura, conocida comúnmente como garrapata del venado, también es el vector de otras enfermedades asociadas a las garrapatas, como la enfermedad de Lyme. Muchas especies de Babesia solo infectan a huéspedes mamíferos no humanos, más comúnmente ganado, caballos y ovejas. B. microti y B. divergens son las dos principales especies patógenas en humanos. Se cree que sus reservorios son el ratón de patas blancas (Peromyscus leucopus), los ratones de campo del género Microtus y el venado de cola blanca (Odocoileus virginianus). Se cree que estas especies de los bosques son reservorios porque, aunque se sabe que transmiten la enfermedad, aún no se ha demostrado que sean completamente reservorios.

La mayoría de los casos de transmisión entre humanos se atribuyen a una garrapata vectora. En 2003, los Centros para el Control y la Prevención de Enfermedades (CDC) reconocieron más de 40 casos de babesiosis contraída a partir de transfusiones de glóbulos rojos concentrados (GRBC), así como dos infecciones documentadas a partir de trasplantes de órganos. Las transfusiones de GRBC que causan infecciones se identificaron mediante pruebas de detección de anticuerpos de B. microti en el donante de sangre. La aparición de transmisión de Babesia a través de transfusiones de sangre de GRBC presiona a las organizaciones gubernamentales (como los CDC) para que intensifiquen las medidas estándar para el control de las donaciones de sangre.

La transmisión también es posible a través de la transmisión congénita (de una madre infectada a su bebé). Como los síntomas pueden no aparecer, muchas mujeres pueden no saber que están infectadas durante el embarazo y, por lo tanto, no se conoce en este momento una medición de la tasa de transmisión congénita.

Actualmente, no se han identificado vectores de la Babesia aviar, pero se supone que son garrapatas. Las especies de Babesia requieren hospedadores vertebrados e invertebrados competentes para mantener los ciclos de transmisión.

Epidemiología

De las especies que infectan a los humanos, B. microti es la más común en América, mientras que B. divergens es la cepa predominante que se encuentra en Europa. Las áreas endémicas son regiones de hábitat de garrapatas, incluidas las regiones forestales del noreste de los Estados Unidos y las regiones templadas de Europa. Los ixódidos, las garrapatas vectores de B. microti, también transmiten la más conocida Borrelia burgdorferi, el agente causal de la enfermedad de Lyme. Por razones que aún no están claras, en áreas endémicas tanto de la enfermedad de Lyme como de la babesiosis, la transmisión de la enfermedad de Lyme prevalece y es más predominante en la región. La prevalencia de la babesiosis en regiones endémicas de malaria sigue siendo desconocida debido a la probabilidad de diagnóstico erróneo de malaria. Como la enfermedad da lugar a un gran número de individuos asintomáticos, muchas poblaciones pueden tener una alta seroprevalencia sin mucha documentación de la enfermedad. Por ejemplo, en Rhode Island y Nantucket, se ha medido una seroprevalencia del 20 al 25 %. La prevalencia de la babesiosis se documenta principalmente durante los meses de mayo a septiembre, cuando la actividad de garrapatas en las regiones endémicas es alta.

Existen 15 especies de aves de Babesia, y se han descrito cuatro de ellas en huéspedes marinos. Babesia poelea se describió en piqueros pardos (Sula leucogaster) en la isla Sand, atolón Johnston, Pacífico central. B. poelea se observó en un piquero enmascarado (Sula dactylatra melanops) de la isla Desnoeufs, Amirantes, Seychelles. Babesia peircei se observó en dos especies de pingüinos, el pingüino burro (Sphenicus demersus) de Sudáfrica y el pingüino chico (Eduyptula minor) del sur de Australia. Babesia bennetti se asoció con la gaviota patiamarilla (Larus cachinnans) de la isla Benidorm, frente a la costa de España. Babesia uriae se encontró en araos comunes en California.

En Europa se han notificado unos 40 casos de babesiosis humana, causada por protozoos intraeritrocíticos (protozoos del interior de los glóbulos rojos) del género Babesia.

Enfermedad

La babesiosis bovina causada por B. bovis es una importante limitación para las industrias ganaderas en todo el mundo.

En humanos

Los signos de infección por B. microti suelen aparecer entre una y ocho semanas después de la picadura de una garrapata infectada. Las infecciones por B. divergens tienen un período de latencia más corto, que suele oscilar entre una y tres semanas. La gravedad de las infecciones por B. microti varía. En el 25% de los casos en adultos y el 50% de los casos en niños, la enfermedad es asintomática o leve, con síntomas parecidos a los de la gripe. En otros casos, los síntomas se caracterizan por fiebre irregular, escalofríos, dolores de cabeza, letargo general, dolor y malestar. En los casos graves, se han documentado efectos de la multiplicación parasitaria, síntomas como anemia hemolítica, ictericia, dificultad para respirar y hemoglobinuria. Las personas con función inmunitaria normal y bazos sanos suelen recuperarse sin tratamiento.

Los pacientes esplenectomizados son más susceptibles a contraer la enfermedad y pueden morir entre cinco y ocho días después de la aparición de los síntomas. Tienen anemia hemolítica grave y se ha documentado hepatomegalia ocasional. Los niveles de parasitemia pueden alcanzar hasta el 85% en pacientes sin bazo, en comparación con el 1-10% en individuos con bazo y sistemas inmunológicos eficaces.

Las complicaciones incluyen insuficiencia respiratoria aguda, insuficiencia cardíaca congestiva e insuficiencia renal. Las infecciones pueden ser fatales en el 5-10% de los pacientes hospitalizados, con un mayor riesgo de muerte en los inmunodeprimidos, los ancianos y aquellos también infectados con la enfermedad de Lyme. Las infecciones por B. divergens tienen una tasa de mortalidad mucho más alta (42%) y se presentan con síntomas más graves. Las personas infectadas experimentan hemoglobinuria seguida de ictericia, fiebre alta persistente, escalofríos y sudores. Si no se tratan, las infecciones por B. divergens pueden desarrollar síntomas similares a un shock con edema pulmonar e insuficiencia renal.

En las aves

Actualmente se desconoce la patogenicidad de B. uriae para los araos. Se encontraron aves con lesiones, anemia y dificultad respiratoria, y los tejidos de los huéspedes aviares estaban afectados. Las infecciones por Babesia peircei pueden causar anemia leve, leucocitosis y deterioro de la función hepática en los pingüinos africanos.

Pruebas de diagnóstico

Como parásito protozoario, la forma más eficaz de identificar una infección por Babesia es mediante un análisis de sangre.

Morfología

Las especies de Babesia ingresan a los glóbulos rojos (eritrocitos) en la etapa de esporozoito. Dentro del glóbulo rojo, los protozoos se vuelven cíclicos y se desarrollan en un anillo de trofozoitos. Los trofozoitos mudan a merozoitos, que tienen una estructura de tétrada denominada en forma de cruz de Malta. Esta morfología de tétrada observada con la tinción de Giemsa de un frotis de sangre fino es exclusiva de Babesia y la distingue de Plasmodium falciparum, un protozoo de morfología similar que causa malaria. El crecimiento de trofozoitos y merozoitos rompe el eritrocito huésped, lo que lleva a la liberación de vermículas, los cuerpos parasitarios infecciosos, que propagan rápidamente los protozoos por toda la sangre. Es importante prestar atención a las morfologías particulares de Babesia en los frotis de sangre, debido a su gran similitud con el parásito de la malaria Plasmodium falciparum. Esto ha dado lugar a que muchos pacientes con babesiosis sean mal diagnosticados. Los pocos factores distintivos de Babesia incluyen protozoos con formas y tamaños variables, el potencial de contener vacuolas y la falta de producción de pigmento. Los trofozoítos que aparecen en una formación de tétrada dentro de un eritrocito también son indicativos de Babesia.

A pesar de los numerosos estudios sobre la babesiosis y la malaria, los diagnósticos erróneos con frotis de sangre pueden ser frecuentes y problemáticos. Para complementar un frotis de sangre, los diagnósticos deben realizarse con una prueba de anticuerpos fluorescentes indirectos (IFA). La prueba de IFA tiene una especificidad mucho mayor que los frotis de sangre teñidos, con detección de anticuerpos en el 88-96% de los pacientes infectados. Las medidas de diagnóstico mediante pruebas de anticuerpos también son particularmente útiles para identificar la prevalencia sérica en individuos asintomáticos. Debido a la transmisibilidad de Babesia a través de transfusiones de sangre, la prueba de IFA sería un medio eficaz para detectar la enfermedad en donaciones de sangre.

Históricamente, el diagnóstico de la babesiosis se realizaba mediante xenodiagnóstico en hámsters para B. microti y en jerbos para B. divergens. Esta técnica diagnóstica se ha abandonado en favor de medidas diagnósticas más rápidas.

Tratamiento

Existen varios métodos para controlar y tratar la babesiosis en animales.

En los seres humanos, muchos se recuperan espontáneamente, habiendo experimentado sólo síntomas leves que no se diagnostican como la enfermedad. Esto casi siempre se observa en infecciones por B. microti, que son generalmente más comunes en los Estados Unidos. Para las infecciones por B. divergens y B. microti más graves, el tratamiento estándar históricamente para individuos sintomáticos era clindamicina oral o intravenosa con quinina oral. Sin embargo, con los resultados de la investigación completada en 2000, los regímenes de tratamiento se han inclinado cada vez más hacia la atovacuona oral con azitromicina oral. Estas últimas son las preferidas, ya que son igualmente efectivas en todos los casos excepto en los más graves y presentan menos reacciones adversas asociadas. En casos graves, se han realizado transfusiones de sangre para reducir la carga parasitaria en un individuo. Otras medidas incluyen abordar y corregir los signos clínicos anormales.

En aves marinas, se ha utilizado primaquina en un estudio para demostrar su eficacia en huéspedes infectados. El tratamiento para la babesiosis consistió en primaquina (1 mg/kg por vía oral cada 24 horas durante 10 días; fosfato de primaquina al 1,76 % m/v en solución estabilizada, Primaquin Solution, MedPet Ltd, Benrose, Sudáfrica). Después, el tratamiento fue seguido por un suplemento de fosfolípidos (1 cápsula/ave por vía oral cada 24 horas durante 12 días; fosfolípidos de soja enriquecidos y desaceitados, 300 mg/cápsula, Essentiale Extreme, Sanofi Aventis Ltd, Midrand, Sudáfrica); como un intento de mitigar los posibles efectos hepatotóxicos de la primaquina. Para prevenir la transmisión de Babesia y otros patógenos transmitidos por garrapatas, todas las aves con ectoparásitos visibles son tratadas con pesticida en polvo (carbaril 50 g/kg) al ingresar, y las instalaciones se limpian a fondo a diario.

Prevención en animales

En 1906 se intentó erradicar la garrapata, vector de la babesiosis bovina, en los Estados Unidos. Cuatro décadas después se registró que esta erradicación se había completado con éxito.

Se puede lograr un control eficaz mediante la vacunación con fenotipos vivos atenuados del parásito. Las vacunas tienen una serie de desventajas, por lo que aún se están investigando vacunas mejores y más seguras. En los últimos años, se han descubierto varias proteínas del parásito con potencial inmunogénico. A través de la reacción en cadena de la polimerasa, la secuenciación genética y el análisis bioinformático de los genes, se encontró un alto grado de conservación (98-100%) entre los aislados brasileños de B. bovis y el aislado T2Bo. Por lo tanto, se considera la inclusión de estos genes en una vacuna recombinante tipo cóctel para la babesiosis bovina causada por B. bovis.

Prevención en seres humanos

La medida de salud pública más eficaz contra la Babesia es evitar la exposición a las garrapatas. Esto puede hacerse mediante la prevención personal, como evitar las zonas infestadas de garrapatas (especialmente durante la temporada alta de garrapatas, entre mayo y septiembre), permanecer cubierto con ropa ligera, buscar garrapatas después de estar al aire libre y quitarse las garrapatas descubiertas de la piel. Otras medidas incluyen la aplicación de DEET, un repelente común que es eficaz contra las garrapatas y los insectos. (Para las personas que reaccionan negativamente al DEET, se deben utilizar repelentes de insectos alternativos). A nivel estatal, si los departamentos de salud están particularmente motivados, la eliminación de las garrapatas es una posibilidad. En 1906, se hicieron esfuerzos para erradicar la garrapata vectora de la forma de babesiosis de la enfermedad bovina en los Estados Unidos. Esta erradicación se registró como completada con éxito cuatro décadas después.

La erradicación completa mediante el control de vectores sería un proyecto a largo plazo que reduciría significativamente la prevalencia tanto de la babesiosis como de la enfermedad de Lyme, pero, como los departamentos de salud pública suelen carecer de fondos, se recomiendan más medidas preventivas.

Debido a la prevalencia relativamente baja de la enfermedad en humanos y a la presencia de varios reservorios, la babesiosis no ha sido candidata a vacunas. En las regiones donde las garrapatas de los animales domésticos se controlan rutinariamente con acaricidas químicos para reducir la incidencia de la infección con B. bovis y B. bigemina, se reducirá el riesgo para los humanos de contraer estos parásitos.

Referencias

  1. ^ Lack JB, Reichard MV, Van Den Bussche RA (2012). "Phylogeny and evolution of the Piroplasmida as inferred from 18S rRNA sequences". International Journal for Parasitology. 42 (4): 353–363. doi:10.1016/j.ijpara.2012.02.005. PMID 22429769.
  2. ^ a b c Schreeg ME, Marr HS, Tarigo JL, Cohn LA, Bird DM, Scholl EH, Levy MG, Wiegmann BM, Birkenheuer AJ (2016). "El genoma mitocondrial secuencia y estructura ayuda en la resolución de la fitoplasmida". PLOS ONE. 11 (11): e0165702. Bibcode:2016PLoSO..1165702S. doi:10.1371/journal.pone.0165702. PMC 5104439. PMID 27832128.
  3. ^ Khayat A, Rathore M (2008). "Ch. 36: Especies de Babesia". En Barton LL, Volpe JJ, Friedman NR (eds.). Las Manifestaciones Neurológicas de Enfermedades Infecciosas Pediatras y Síndromes de Inmunodeficiencia. Humana Press. pp. 343–6. ISBN 978-1-59745-391-2.
  4. ^ "Babesia". Navegador de taxonomía NCBI5864.
  5. ^ a b Nowell F (noviembre de 1969). "La imagen de la sangre resultante de Nuttallia (= Babesia) rodhaini y Nuttallia (= Babesia) microti infecciones en ratas y ratones". Parasitología. 59 (4): 991–1004. doi:10.1017/S0031182000070475. PMID 4982449. S2CID 43157316.
  6. ^ a b c d e "DPDx: Identificación de Laboratorios de Parasitos de Salud Pública. Babesiosis". CDC. 2009-03-05. Archivado desde el original en 2013-03-07.
  7. ^ a b c d e f g h Ristic M, Ambroise-Thomas P, Kreier JP (1984). Malaria y Babesiosis: búsquedas de investigación y medidas de control. Nuevas Perspectivas en Microbiología Clínica. Vol. 7. M. Nijhoff. pp. 100–170. ISBN 978-0-89838-675-2 OCLC 709342375.
  8. ^ Spielman A, Wilson ML, Levine JF, Piesman J (enero de 1985). "Ecología de Ixodes Dammini-Borne Babesiosis Humana y Enfermedad de Lyme". Examen anual de la Entomología. 30 (1): 439-460. doi:10.1146/annurev.en.30.010185.002255. ISSN 0066-4170.
  9. ^ a b c d e f h i j k l Despommier DD (1995). Enfermedades parasitarias (3a ed.). Springer-Verlag. pp. 224–6. ISBN 978-0-387-94223-0.
  10. ^ a b Cornillot E, Hadj-Kaddour K, Dassouli A, et al. (octubre de 2012). "Sequencing of the smallest Apicomplexan genome from the human pathogen Babesia microti". Resoluciones de ácidos nucleicos. 40 (18): 9102-14. doi:10.1093/nar/gks700. PMC 3467087. PMID 22833609.
  11. ^ a b c Yabsley M, Greiner E, Tseng F, Garner M, Nordhausen R, Ziccardi M, Borjesson D, Zabolotzky S (2009-05-01). "Descripción de las especies de Babesia Novel y las lesiones asociadas de Murres Comunes (Uria aalge) de California". The Journal of Parasitology. 95 (5): 1183-8. doi:10.1645/GE-1955.1. PMID 19348514. S2CID 6677489.
  12. ^ Vannier E, Krause PJ (junio de 2012). "La babesiosis humana". N. Engl. J. Med. 366 (25): 2397–407. doi:10.1056/NEJMra1202018. PMID 22716978. S2CID 205116383.
  13. ^ Schultz M (diciembre de 2008). "Photo Quiz: Theobald Smith". Emerg Infect Dis. 14 (12): 1940–1942. doi:10.3201/eid1412.081188. ISSN 1080-6059. PMC 2634653.
  14. ^ Beaver PC, Jung RC, Cupp EW, Craig CF (1984). Parasitología clínica (9a edición). Lea " Febiger. pp. 205–8. ISBN 978-0-8121-0876-7.
  15. ^ a b c d e f g h Chauvin A, Moreau E, Bonnet S, Plantard O, Malandrin L (21 de abril de 2009). "Babesia y sus anfitriones: adaptación a interacciones duraderas como forma de lograr una transmisión eficiente". Investigación veterinaria. 40 (2): 37. doi:10.1051/vetres/2009020. PMC 2695028. PMID 19379662.
  16. ^ Cornillot E, Dassouli A, Garg A, et al. (2013). "La cartografía completa del genoma y la reorganización de los genomas nucleares y mitocondriales de Babesia microti isolates". PLOS ONE. 8 (9): e72657. Código:2013PLoSO...872657C. doi:10.1371/journal.pone.0072657. PMC 3762879. PMID 24023759.
  17. ^ a b Herwaldt BL, Cacciò S, Gherlinzoni F, et al. (agosto de 2003). "Caracterización molecular de un organismo no bebesia divergens que causa la babesiosis zoonótica en Europa". Infecto emergente. Dis. 9 (8): 942-8. doi:10.3201/eid0908.020748. PMC 3020600. PMID 12967491. Gráfico 2. Panel of computer-generated electronic images of photomicrographs of Babesia- eritrocitos infectados en una mancha manchada de Giemsa de sangre periférica...
  18. ^ a b "CDC2 - Babesiosis" (PDF). www.cdc.gov. Centros de Control y Prevención de Enfermedades. Retrieved 2018-09-20.
  19. ^ a b c Quintão-Silva MG (diciembre de 2003). "Infection rate of Babesia spp. sporokinetes in engorged Boophilus microplus from an area of enzootic stability in the State of Minas Gerais, Brazil". Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 98 (8): 999–1002. doi:10.1590/S0074-02762003000800003. hdl:1807/1717. PMID 15049079.
  20. ^ a b Randolph, S. E. (2004). "Evidence that climate change has caused 'emergence' of tick-borne diseases in Europe?". International Journal of Medical Microbiology. 293: 5–15. doi:10.1016/s1433-1128(04)80004-4. PMID 15146980.
  21. ^ a b c Laha, Ramgopal, M. Das, A. Sen (2015). "Morfología, epidemiología y fitogenia de Babesia: Una visión general". Parasitología tropical. 5 (2): 94–100 doi:10.4103/2229-5070.162490. PMC 4557164. PMID 26629451.
  22. ^ Karbowiak G (2004). "Reserva zoonotica de Babesia microti en Polonia". Pol. J. Microbiol. 53 Suppl: 61–65. PMID 15787199.
  23. ^ Telford SR, Spielman A (enero de 1993). "Reservoir competencia de ratones blancos para Babesia microti". J. Med. Entomol. 30 (1): 223–227. doi:10.1093/jmedent/30.1.223. PMID 8433329.
  24. ^ Lux JZ, Weiss D, Linden JV, et al. (enero de 2003). "La babesiosis asociada a la trasfusión después del trasplante cardíaco". Infecto emergente. Dis. 9 (1): 116–119. doi:10.3201/eid0901.020149. PMC 2873739. PMID 12533293.
  25. ^ Homer MJ, Aguilar-Delfin I, Telford SR, Krause PJ, Persing DH (2000-07-01). "Babesiosis". Microbiología clínica Reseñas. 13 (3): 451-469. doi:10.1128/cmr.13.3.451. ISSN 0893-8512. PMC 88943. PMID 10885987.
  26. ^ a b c d "Babesiosis". National Institute of Allergy and Infectious Diseases, National Institutes of Health. 2009-02-19. Archivado desde el original en 2009-03-05.
  27. ^ a b c d e f g Gelfand JA, Vannier E (6 de marzo de 2008). "Ch. 204: Babesiosis". Principios de medicina interna de Harrison, 17e. McGraw-Hill's Access Medicine. ISBN 978-0071466332.
  28. ^ Work TM, Rameyer RA (agosto de 1997). "Descripción y Epizootiología de Babesia poelea n. sp. en Boobies Marrones (Sula leucogaster (Boddaert)) en Sand Island, Johnston Atoll, Pacífico Central". The Journal of Parasitology. 83 (4): 734-738. doi:10.2307/3284253. ISSN 0022-3395. JSTOR 3284253. PMID 9267418. S2CID 17889397.
  29. ^ Peirce M (junio de 1975). "Nuttallia França, 1909 (babesiidae) preocupado por Nuttallia Dall, 1898 (psammobiidae): Una reevaluación de la posición taxonómica de las piroplasmas aviares". International Journal for Parasitology. 5 (3): 285–287. doi:10.1016/0020-7519(75)90075-2. ISSN 0020-7519. PMID 1126783.
  30. ^ Earlé RA, Huchzermeyer FW, Bennett GF, Brossy JJ (enero de 1993). "Babesia peirceisp. nov. del pingüino del culo". South African Journal of Zoology. 28 (2): 88–90. doi:10.1080/02541858.1993.11448298. ISSN 0254-1858.
  31. ^ a b Merino S (abril de 1998). "Babesia bennetti n. sp. del Gull Amarillo (Larus cachinnans, Aves, Laridae) en la Isla de Benidorm, Mar Mediterráneo". The Journal of Parasitology. 84 (2): 422-424. doi:10.2307/3284504. ISSN 0022-3395. JSTOR 3284504. PMID 9576519.
  32. ^ Hunfeld K, Hildebrandt A, Gray J (septiembre de 2008). "Babesiosis: Perspicacias recientes de una enfermedad antigua". International Journal for Parasitology. 38 11): 1219–1237. doi:10.1016/j.ijpara.2008.03.001. ISSN 0020-7519. PMID 18440005.
  33. ^ Parsons NJ, Gous TA, Schaefer AM, Vanstreels RE (2016-03-09). "Evaluación de la salud de los pingüinos africanos (Spheniscus demersus) en el sur de África". Onderstepoort J Vet Res. 83 (1): e1–e13. doi:10.4102/ojvr.v83i1.1147. ISSN 2219-0635. PMC 6238701. PMID 27796116.
  34. ^ Krause PJ, Lepore T, Sikand VK, et al. (noviembre de 2000). "Atovaquona y azitromicina para el tratamiento de la babesiosis". N. Engl. J. Med. 343 (20): 1454–1458. doi:10.1056/NEJM200011163432004. PMID 11078770.
  35. ^ a b Thijl Vanstreels RE, Hurtado R, Snyman A, Roberts DG, Parsons NJ, Pistorius PA (2019-09-09). "Tratamiento básico empírico de Babesiosis aviar en aves marinas". Journal of Avian Medicine and Surgery. 33 (3): 258–264. doi:10.1647/20178-373. ISSN 1082-6742. S2CID 201949698.
  • Krause PJ, et al. (27 de enero de 2021). "Clinical Practice Guidelines by the Infectious Diseases Society of America (IDSA): 2020 Guideline on Diagnosis and Management of Babesiosis". Clínica Infecciosa Enfermedades. 72 (2): e49–e64. doi:10.1093/cid/ciaa1216. PMID 33252652.
  • Hoja informativa del Departamento de Salud del Estado de Nueva York
  • Centers for Disease Control and Prevention: About Babesiosis
  • CDC Laboratorio de identificación de parásitos de interés en salud pública: Babesiosis
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