Aralquilamina N-acetiltransferasa

format_list_bulleted Contenido keyboard_arrow_down
ImprimirCitar

La N-acetiltransferasa de aralquilamina (AANAT) (EC 2.3.1.87), también conocida como N-acetiltransferasa de aralquilamina o N-acetiltransferasa de serotonina (SNAT), es una enzima que participa en la producción rítmica día/noche de melatonina, mediante la modificación de la serotonina. En los seres humanos, está codificada por el gen AANAT de ~2,5 kb que contiene cuatro exones, ubicado en el cromosoma 17q25. El gen se traduce en una enzima grande de 23 kDa. Está bien conservada a través de la evolución y la forma humana de la proteína es 80 por ciento idéntica a la AANAT de oveja y rata. Es una enzima dependiente de acetil-CoA de la familia de N-acetiltransferasas (GNAT) relacionada con GCN5. Puede contribuir a enfermedades genéticas multifactoriales, como la alteración del comportamiento en el ciclo sueño/vigilia, y se están realizando investigaciones con el objetivo de desarrollar fármacos que regulen la función de la AANAT.

Nomenclature

El nombre sistemático de esta clase de enzimas es acetil-CoA:2-ariletilamina N-acetiltransferasa. Otros nombres de uso común son:

  • AANAT
  • Arylalkylamine N-acetyltransferase
  • Enzima de ritmo de melatonina
  • Serotonin acetylase
  • Serotonin acetyltransferase
  • Serotonin N-acetyltransferase

El nombre oficialmente aceptado es aralquilamina N-acetiltransferasa.

Función y mecanismo

Distribución del tejido

La transcripción del ARNm de AANAT se expresa principalmente en el sistema nervioso central (SNC). Es detectable en niveles bajos en varias regiones del cerebro, incluida la glándula pituitaria y la retina. Es más abundante en la glándula pineal, que es el sitio de la síntesis de melatonina. La AANAT del cerebro y la pituitaria puede estar involucrada en la modulación de aspectos dependientes de la serotonina del comportamiento humano y la función pituitaria.

Función fisiológica

En las células pinealocitos de la glándula pineal, la aralquilamina N-acetiltransferasa participa en la conversión de serotonina en melatonina. Es la penúltima enzima en la síntesis de melatonina, que controla el ritmo día/noche en la producción de melatonina en la glándula pineal de los vertebrados. La melatonina es esencial para la reproducción estacional, modula la función del reloj circadiano en el núcleo supraquiasmático e influye en la actividad y el sueño. Debido a su importante papel en el ritmo circadiano, la AANAT está sujeta a una amplia regulación que responde a la exposición a la luz (ver Regulación). Puede contribuir a enfermedades genéticas multifactoriales, como la alteración del comportamiento en el ciclo sueño/vigilia y los trastornos del estado de ánimo.

Las reacciones químicas catalizadas por AANAT

La reacción química primaria catalizada por la aralquilamina N-acetiltransferasa utiliza dos sustratos, acetil-CoA y serotonina. La AANAT cataliza la transferencia del grupo acetilo de la acetil-CoA a la amina primaria de la serotonina, produciendo así CoA y N-acetilserotonina. En los seres humanos, otros sustratos endógenos de la enzima incluyen neuromoduladores de aminas traza específicas, a saber, fenetilamina, tiramina y triptamina, que a su vez forman N-acetilfenetilamina, N-acetiltiramina y N-acetiltriptamina.

En la biosíntesis de la melatonina, la N-acetilserotonina es metilada por otra enzima, la N-acetilserotonina O-metiltransferasa (ASMT), para generar melatonina. Se ha sugerido que la reacción de la N-acetiltransferasa es el paso determinante de la velocidad y, por lo tanto, la N-acetiltransferasa de serotonina ha surgido como un objetivo para el diseño de inhibidores (ver a continuación).

La AANAT obedece a un mecanismo de complejo ternario ordenado. Los sustratos se unen secuencialmente (ordenadamente) con la unión de acetil-CoA a la enzima libre seguida por la unión de serotonina para formar el complejo ternario. Una vez que se ha producido la transferencia del grupo acetilo, los productos se liberan ordenadamente con N-acetil-serotonina primero y CoA por último.

Estructura

La arilalquilamina N-acetiltransferasa es un polipéptido monomérico con una longitud de 207 residuos de aminoácidos y un peso molecular de 23.344 daltons. La estructura secundaria consta de hélices alfa y láminas beta. Es un 28 por ciento helicoidal (10 hélices; 60 residuos) y un 23 por ciento lámina beta (9 cadenas; 48 residuos). Esta familia comparte cuatro motivos de secuencia conservados designados A-D. El motivo B sirve como ubicación de la ranura de unión de la serotonina. La estructura se determinó mediante difracción de rayos X.

Se han resuelto varias estructuras para esta clase de enzimas, con códigos de acceso PDB 1CJW, 1B6B, 1L0C y 1KUV/1KUX/1KUY.

La aralquilamina N-acetiltransferasa también se ha cristalizado en complejo con 14-3-3ζ de la familia de proteínas 14-3-3, con el código de acceso PDB 1IB1.

La superfamilia del GNAT

La aralquilamina N-acetiltransferasa pertenece a la superfamilia de las N-acetiltransferasas relacionadas con GCN5 (GNAT), que consta de 10.000 acetiltransferasas, llamadas así debido a su homología de secuencia con una clase de factores de transcripción eucariotas, entre ellos la levadura GCN5. Otros miembros bien estudiados de la superfamilia son la glucosamina-6-fosfato N-acetiltransferasa y las histonas acetiltransferasas.

Todos los miembros de esta superfamilia tienen un pliegue estructuralmente conservado que consiste en una hebra N-terminal seguida de dos hélices, tres hebras β antiparalelas, seguidas de una hélice central "distintiva", una quinta hebra β, una cuarta hélice α y una hebra β final. Estos elementos están conservados casi universalmente a pesar de la escasa identidad de pares en los alineamientos de secuencias.

Reglamento

La regulación de la AANAT varía entre especies. En algunas, los niveles de AANAT oscilan drásticamente entre los períodos de luz y oscuridad, y por lo tanto controlan la síntesis de melatonina. En otras, el ritmo se regula principalmente a nivel de proteínas. Un ejemplo es el de los roedores, donde los niveles de ARNm de AANAT aumentan más de 100 veces en los períodos de oscuridad. En otras especies, el AMP cíclico desempeña un papel importante en la inhibición de la degradación proteolítica de AANAT, elevando los niveles de proteína durante la noche. Los experimentos con AANAT humana expresada en una línea celular 1E7 muestran un aumento de aproximadamente 8 veces en la actividad enzimática tras la exposición a la forskolina.

La degradación dinámica del ARNm de AANAT ha demostrado ser esencial para la acción circadiana de la enzima. Las secuencias 3'UTR tienen importancia con respecto a la degradación rítmica del ARNm de AANAT en algunas especies. En roedores, varias hnRNP mantienen la degradación dinámica del ARNm de AANAT. En otras especies, como ungulados y primates, se sospecha que los ARNm estables de AANAT con un 3'UTR más corto no están bajo el control de las hnRNP que se unen y dirigen la degradación del ARNm de AANAT en roedores.

La exposición a la luz induce señales que viajan desde las células de la retina, lo que finalmente causa una caída en la estimulación de la glándula pineal por noradrenalina. Esto, a su vez, conduce a una cascada de señalización, que resulta en la fosforilación por parte de la proteína quinasa A de dos residuos clave Ser y Thr de la serotonina N-acetiltransferasa. La fosforilación de estos residuos causa cambios en la actividad catalítica a través del reclutamiento e interacción con las proteínas 14-3-3, específicamente 14-3-3ζ.

Otra proteína que interactúa y regula la actividad de AANAT es la proteína quinasa C. La proteína quinasa C actúa, al igual que la proteína quinasa A, sobre los residuos de treonina y serina, mejorando la estabilidad y la actividad enzimática de AANAT.

Se ha sugerido que la inhibición de la unión del acetil-CoA al sitio catalítico a través de la formación y escisión de enlaces disulfuro intramoleculares es un mecanismo de regulación. La formación de un enlace disulfuro entre dos residuos de cisteína dentro de la proteína cierra el embudo hidrofóbico del sitio catalítico y, por lo tanto, actúa como un interruptor de encendido/apagado para la actividad catalítica. Todavía no se sabe con certeza si este mecanismo está presente en las células in vivo a través de la regulación de las condiciones redox intracelulares, pero se sugiere que el glutatión (GSH) podría ser un regulador in vivo de la formación y escisión de estos enlaces disulfuro.

Inhibidores de AANAT y relevancia clínica

Los inhibidores de la AANAT pueden conducir eventualmente al desarrollo de un fármaco que sería útil en la investigación de la biología circadiana y en el tratamiento de los trastornos del sueño y del estado de ánimo. Se han descubierto inhibidores sintéticos de la enzima. Sin embargo, no se ha informado de ningún inhibidor de la AANAT con una potente actividad in vivo. Hasta ahora, se han descrito cinco clases de inhibidores de la AANAT en la literatura. A continuación se enumeran las cinco clases:

Derivados de melatonina

Desde que se informó que la melatonina es un inhibidor competitivo de la AANAT, este neurotransmisor parece ejercer un control autorregulatorio sobre su propia biosíntesis. Por lo tanto, se evaluaron análogos estructurales sueltos de la hormona indolamina en la AANAT y se descubrieron inhibidores moderados.

Inhibidores peptídicos

Se examinaron bibliotecas combinatorias de péptidos de tri-, tetra- y pentapéptidos con diversas composiciones de aminoácidos como posibles fuentes de inhibidores, para ver si sirven como inhibidores competitivos puros o mixtos para la enzima hAANAT. Los estudios de modelado molecular y de relación estructura-actividad permitieron identificar el residuo de aminoácido del inhibidor pentapéptido S 34461 que interactúa con el sitio de unión del cosustrato.

Analógicos de substrato

Se sugiere que la AANAT cataliza la transferencia de un grupo acetilo desde el acetil-CoA a la serotonina, con la participación de un complejo ternario intermedio, para producir N-acetilserotonina. Con base en este mecanismo, se podría esperar que un inhibidor análogo de bisustrato, derivado de la unión de partes de indol y CoASH, podría imitar potencialmente el complejo ternario y ejercer una fuerte inhibición de la AANAT. El primer análogo de bisustrato (1), que une la triptamina y la CoA a través de un puente acetilo, fue sintetizado por Khalil y Cole, y demostró ser un inhibidor de la AANAT muy potente y específico.

N-Haloacetilados derivados

Se ha demostrado que la AANAT también tiene una actividad alquiltransferasa secundaria, así como una actividad acetiltransferasa. Se desarrollaron N-haloacetiltriptaminas que sirven como sustratos de la alquiltransferasa AANAT y también son potentes inhibidores in vitro (de bajo peso molecular) contra la actividad acetiltransferasa de la AANAT. La AANAT cataliza la reacción entre la N-bromoacetiltriptamina (BAT) y la CoA reducida, lo que da como resultado un inhibidor análogo de bisustrato de unión fuerte. El primer inhibidor permeable a las células sintetizado de la N-bromoacetiltriptamina de la AANAT se estudió más a fondo en la secreción de melatonina de las glándulas pineales de ratas y cerdos. Nuevos derivados de N-halogenoacetilo que conducen a una fuerte inhibición in situ de la AANAT. El concepto detrás del mecanismo de acción de estos precursores se estudió siguiendo la biosíntesis del inhibidor a partir de BAT tritiado en una célula viva.

Compuestos basados en Rhodanine

Se han identificado los primeros inhibidores selectivos y similares a fármacos de la AANAT. Lawrence M. Szewczuk et al. han examinado virtualmente más de un millón de compuestos mediante acoplamiento tridimensional de alto rendimiento en el sitio activo de la estructura de rayos X de la AANAT y, a continuación, han probado 241 compuestos como inhibidores. Una clase de compuestos que contiene un armazón de rodanina ha demostrado una inhibición competitiva micromolar baja contra la acetil-CoA y ha demostrado ser eficaz para bloquear la producción de melatonina en las células pineales.

El estudio reciente sobre el inhibidor de AANAT ha descrito el descubrimiento de una nueva clase de inhibidores no peptídicos de AANAT basados en un armazón de 2,2'-bitienilo.

Véase también

  • Acetyltransferase

Referencias

  1. ^ a b c d PDB: 1KUX; Wolf E, De Angelis J, Khalil EM, Cole PA, Burley SK (marzo de 2002). "Evaluaciones cristalográficas de la serotonina N-acetilransferasa catalisis e inhibición". J. Mol. Biol. 317 2): 215–24. doi:10.1006/jmbi.2001.5371. PMID 11902838.
  2. ^ a b c "Entrez Gene: arylalkylamine N-acetyltransferase".
  3. ^ a b Coon SL, Mazuruk K, Bernard M, Roseboom PH, Klein DC, Rodriguez IR (mayo de 1996). "El gen de serotonina humana N-acetyltransferase (EC 2.3.1.87): estructura, localización cromosómica y expresión de tejido". Genómica. 34 1): 76 –84. doi:10.1006/geno.1996.0243. PMID 8661026.
  4. ^ "IUBMB Enzyme Nomenclature EC 2.3.1.87". Comité de Nomenclatura de la Unión Internacional de Bioquímica y Biología Molecular (NC-IUBMB). Retrieved 15 de noviembre 2014.
  5. ^ "EC 2.3.1.87 - aralkylamine N-acetyltransferase". BRENDA. Technische Universität Braunschweig. Julio de 2014. Retrieved 10 de noviembre 2014.
  6. ^ a b Zheng W, Cole PA (junio 2002). "Serotonina N-acetilransferase: mecanismo e inhibición". Curr. Med. Chem. 9 (12): 1187 –99. doi:10.2174/0929867023370013. PMID 12052171.
  7. ^ J. De Angelis; J. Gastel; D. C. Klein; P. A. Cole (enero de 1998). "Análisis cinemático del mecanismo catalítico de serotonina N-acetilransferase (EC 2.3.1.87)". El Diario de Química Biológica. 273 5): 3045–3050. doi:10.1074/jbc.273.5.3045. PMID 9446620.
  8. ^ Hickman AB, Namboodiri MA, Klein DC, Dyda F (abril de 1999). "La base estructural del sustrato ordenado vinculante por serotonina N-acetyltransferase: complejo de enzimas en 1.8 Una resolución con un analógico bisubstrato". Celular. 97 3): 361–9. doi:10.1016/S0092-8674(00)80745-XPMID 10319816. S2CID 18272015.
  9. ^ Hickman AB, Klein DC, Dyda F (enero de 1999). "La biosíntesis de melatonina: la estructura de la serotonina N-acetilransferase en 2.5 Una resolución sugiere un mecanismo catalítico". Mol. Celular. 3 1): 23 –32. doi:10.1016/S1097-2765(00)80171-9. PMID 10024876.
  10. ^ Scheibner KA, De Angelis J, Burley SK, Cole PA (mayo de 2002). "Investigación de los papeles de residuos catalíticos en serotonina N-acetilransferase". J. Biol. Chem. 277 (20): 18118 –26. doi:10.1074/jbc.M200595200. PMID 11884405.
  11. ^ Obsil T, Ghirlando R, Klein DC, Ganguly S, Dyda F (abril de 2001). "Crystal structure of the 14-3-3zeta:serotonin N-acetyltransferase complex. un papel para el andamio en la regulación de enzimas". Celular. 105 2): 257–67. doi:10.1016/S0092-8674(01)00316-6. PMID 11336675. S2CID 9564413.
  12. ^ Matthew W. Vetting; Luiz Pedro S. de Carvalho; Michael Yu; Subray S. Hegde; Sophie Magnet; Steven L. Roderick " John S. Blanchard (enero de 2005). "Strutura y funciones de la superfamilia GNAT de acetyltransferases". Archivos de Bioquímica y Biofísica. 433 1): 212–226. doi:10.1016/j.abb.2004.09.003. PMID 15581578.
  13. ^ Klein, D. C.; Coon, S. L.; Roseboom, P. H.; Weller, J. L.; Bernard, M.; Gastel, J. A.; Zatz, M.; Iuvone, P. M.; Rodriguez, I. R.; Bégay, V.; Falcón, J.; Cahill, G. M.; Cassone, V. M. (1997); Baler "La enzima generadora de ritmo de melatonina: Regulación molecular de la serotonina N-acetilransferasa en la glándula pineal". Progresos recientes en la investigación hormonal. 52: 307 –357, discusión 357-8. PMID 9238858.
  14. ^ Coon SL, Weller JL, Korf HW, Namboodiri MA, Rollag M, Klein DC (junio de 2001). "cAmp regulation of arylalkylamine N-acetyltransferase (AANAT, EC 2.3.1.87): a new cell line (1E7) provides evidence of intracellular AANAT activation". J. Biol. Chem. 276 (26): 24097–107. doi:10.1074/jbc.M011298200. PMID 11313340.
  15. ^ Kim TD, Kim JS, Kim JH, Myung J, Chae HD, Woo KC, Jang SK, Koh DS, Kim KT (abril de 2005). "La degradación rítmica de la serotonina N-acetilransferasa mRNA es esencial para el mantenimiento de su oscilación circadiana". Mol. Biol. 25 (8): 3232–46. doi:10.1128/MCB.25.8.32-3246.2005. PMC 1069600. PMID 15798208.
  16. ^ Szewczuk LM, Tarrant MK, Sample V, Drury WJ, Zhang J, Cole PA (septiembre de 2008). "Análisis de la serotonina N-acetyltransferase regulación in vitro y en células vivas usando semisíntesis de proteína". Bioquímica. 47 (39): 10407 –19. doi:10.1021/bi801189d. PMC 2682328. PMID 18771288.
  17. ^ Choi BH, Chae HD, Park TJ, Oh J, Lim J, Kang SS, Ha H, Kim KT (julio de 2004). "Cinase de proteínas C regula la actividad y estabilidad de la serotonina N-acetilransferase". J. Neurochem. 90 2): 442 –54. doi:10.1111/j.1471-4159.2004.02495.x. PMID 15228600. S2CID 42638894.
  18. ^ Tsuboi S, Kotani Y, Ogawa K, Hatanaka T, Yatsushiro S, Otsuka M, Moriyama Y (noviembre de 2002). "Un puente de disulfudo intramolecular como un interruptor catalítico para la serotonina N-acetyltransferase". J. Biol. Chem. 277 (46): 44229 –35. doi:10.1074/jbc.M203305200. PMID 12215431.
  19. ^ a b Lawrence M. Szewczuk; S. Adrian Saldanha; Surajit Ganguly; Erin M. Bowers; Margarita Javoroncov; Balasubramanyam Karanam; Jeffrey C. Culhane; Marc A. Holbert; David C. Klein; Ruben Abagyan; Philip A. Cole (noviembre de 2007). "De novo descubrimiento de inhibidores de serotonina N-acetilransferase". Revista de Química Medicinal. 50 (22): 5330 –5338. doi:10.1021/jm0706463. PMC 2531295. PMID 17924613.
  20. ^ a b Ferry G, Ubeaud C, Mozo J, Péan C, Hennig P, Rodriguez M, Scoul C, Bonnaud A, Nosjean O, Galizzi JP, Delagrange P, Renard P, Volland JP, Yous S, Lesieur D, Boutin JA (enero de 2004). "Nuevos análogos de sustrato de serotonina humana N-acetilransferase producen inhibidores in situ específicos y potentes". Eur. J. Biochem. 271 2): 418 –28. doi:10.1046/j.1432-1033.2003.03942.x. PMID 14717709.
  21. ^ Zheng W, Cole PA (octubre de 2003). "Inhibidores analógicos de serotonina N-acetyltransferase: la importancia de ser neutral". Bioorg. Chem. 31 5): 398 –411. doi:10.1016/S0045-2068(03)00081-6. PMID 12941292.
  22. ^ a b Lepailleur A, Lemaître S, Feng X, Sopkova-de Oliveira Santos J, Delagrange P, Boutin J, Renard P, Bureau R, Rault S (marzo 2010). "Estudio basado en receptores y ligands sobre derivados novedosos de 2,2'-bithienilo como inhibidores AANAT no peptídicos". J Modelo Chem Inf. 50 3): 446 –60. doi:10.1021/ci9004805. PMID 20196559.
  23. ^ Shen S, Brémont B, Serraz I, Andrieux J, Poncet A, Mathé-Allainmat M, Chanut E, Trouvin JH, Langlois M (junio de 1996). "Structure-actividad relaciones para sustratos e inhibidores de pineal 5-hidroxitryptamine-N-acetyltransferase: estudios preliminares". Eur. J. Pharmacol. 307 2): 133 –40. doi:10.1016/0014-2999(96)00228-2. PMID 8832214.
  24. ^ Ferry G, Loynel A, Kucharczyk N, Bertin S, Rodriguez M, Delagrange P, Galizzi JP, Jacoby E, Volland JP, Lesieur D, Renard P, Canet E, Fauchère JL, Boutin JA (marzo 2000). "Estudios de especificidad e inhibición de la serotonina humana N-acetyltransferase". J. Biol. Chem. 275 (12): 8794–805. doi:10.1074/jbc.275.12.8794. PMID 10722724.
  25. ^ Page, A.I. (1990). "Inhibición de la enzima". Química Medicinal Integral. 2: 61–87.
  26. ^ Khalil, Ehab M.; Philip A. Cole (6 de junio de 1998). "Un posible inhibidor de la enzima del Rhythm Melatonin". J. Am. Chem. Soc. 120 (24): 6195 –6196. doi:10.1021/ja981365a.
  27. ^ a b Khalil EM, De Angelis J, Ishii M, Cole PA (octubre de 1999). "Inhibición basada en el mecanismo de la enzima del ritmo de melatonina: explotación farmacológica de la plasticidad funcional del sitio activo". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América. 96 (22): 12418–12423. Bibcode:1999PNAS...9612418K doi:10.1073/pnas.96.22.12418. PMC 22936. PMID 10535937.
  28. ^ Zheng W, Scheibner KA, Ho AK, Cole PA (abril de 2001). "Estudios mecanísticos sobre la actividad alquiltransferasa de la serotonina N-acetilransferase". Química & Biología. 8 4): 379–389. doi:10.1016/s1074-5521(01)00020-5. PMID 11325593.
  29. ^ Lewczuk B, Zheng W, Prusik M, Cole PA, Przybylska-Gornowicz B (octubre de 2005). "N-bromoacetiltriptamina inhibe fuertemente y reversiblemente la secreción in vitro de melatonina de pianólocitos mamíferos". Neuroendocrinología Cartas. 26 5): 581 –592. PMID 16264397.

Más lectura

  • Voisin P, Namboodiri MA, Klein DC (1984). "Arylamine N-acetyltransferase y arylalkylamine N-acetyltransferase en la glándula pineal mamífera". J. Biol. Chem. 259 (17): 10913–8. doi:10.1016/S0021-9258(18)90600-9. PMID 6469990.
  • Fauchere JL, Boutin JA (2000). "Especificidad substrato y estudios de inhibición de la serotonina humana N-acetyltransferase". J. Biol. Chem. 275 (12): 8794–805. doi:10.1074/jbc.275.12.8794. PMID 10722724.
  • Khalil EM, Cole PA (1998). "Un potente inhibidor de la enzima ritmo melatonina". J. Am. Chem. Soc. 120 (24): 6195 –6196. doi:10.1021/ja981365a.
  • Serotonin+N-Acetyltransferase en la Biblioteca Nacional de Medicina de los EE.UU.
  • Ubicación del gen humano AANAT en el explorador de genomas UCSC.
  • Detalles del gen humano AANAT en el navegador de genoma UCSC.

Este artículo incorpora texto de la Biblioteca Nacional de Medicina de los Estados Unidos, que es de dominio público.

Más resultados...
Tamaño del texto:
undoredo
format_boldformat_italicformat_underlinedstrikethrough_ssuperscriptsubscriptlink
save