Animal genéticamente modificado

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Los animales genéticamente modificados son animales que han sido modificados genéticamente para diversos fines, como la producción de fármacos, la mejora del rendimiento, el aumento de la resistencia a enfermedades, etc. La gran mayoría de los animales genéticamente modificados se encuentran en la etapa de investigación, mientras que el número de animales próximos a entrar en el mercado sigue siendo pequeño.

Producción

El proceso de ingeniería genética de mamíferos es lento, tedioso y costoso. Al igual que con otros organismos genéticamente modificados (OGM), primero los ingenieros genéticos deben aislar el gen que desean insertar en el organismo huésped. Este puede obtenerse de una célula que contenga el gen o sintetizarse artificialmente. Si el gen elegido o el genoma del organismo donante se ha estudiado exhaustivamente, es posible que ya esté disponible en una biblioteca genética. Posteriormente, el gen se combina con otros elementos genéticos, como una región promotora y una terminadora, y generalmente un marcador seleccionable.Existen diversas técnicas para insertar el gen aislado en el genoma del huésped. En los animales, el ADN se inserta generalmente mediante microinyección, donde se puede inyectar a través de la envoltura nuclear de la célula directamente en el núcleo, o mediante el uso de vectores virales. Los primeros animales transgénicos se produjeron inyectando ADN viral en embriones y luego implantándolos en hembras. Es necesario asegurar la presencia del ADN insertado en las células madre embrionarias. El embrión se desarrollaría y se esperaría que parte del material genético se incorporara a las células reproductivas. Posteriormente, los investigadores tendrían que esperar hasta que el animal alcanzara la edad reproductiva para analizar la presencia del gen en cada célula de la descendencia mediante PCR, hibridación Southern y secuenciación de ADN.Las nuevas tecnologías facilitan y hacen más precisas las modificaciones genéticas. Se han desarrollado técnicas de selección genética, que crean roturas bicatenarias y aprovechan los sistemas naturales de reparación de la recombinación homóloga de las células, para dirigir la inserción a ubicaciones exactas. La edición genómica utiliza nucleasas diseñadas artificialmente que crean roturas en puntos específicos. Existen cuatro familias de nucleasas diseñadas: meganucleasas, nucleasas de dedo de zinc, nucleasas efectoras tipo activador de la transcripción (TALEN) y el sistema Cas9-ARN guía (adaptado de CRISPR). TALEN y CRISPR son los dos más utilizados y cada uno presenta sus propias ventajas. Las TALEN tienen una mayor especificidad de diana, mientras que CRISPR es más fácil de diseñar y más eficiente. El desarrollo del sistema de edición genética CRISPR-Cas9 ha reducido a la mitad el tiempo necesario para desarrollar animales modificados genéticamente.
En 1974, Rudolf Jaenisch creó el primer animal GM.
Los humanos han domesticado animales desde aproximadamente el año 12 000 a. C., mediante la cría selectiva o selección artificial (en contraste con la selección natural). El proceso de cría selectiva, en el que se utilizan organismos con rasgos deseados (y, por lo tanto, con los genes deseados) para reproducir la siguiente generación y los organismos que carecen de dicho rasgo no se reproducen, es precursor del concepto moderno de modificación genética. Diversos avances en genética permitieron a los humanos alterar directamente el ADN y, por lo tanto, los genes de los organismos. En 1972, Paul Berg creó la primera molécula de ADN recombinante al combinar el ADN de un virus de mono con el del virus lambda.En 1974, Rudolf Jaenisch creó un ratón transgénico introduciendo ADN extraño en su embrión, convirtiéndolo en el primer animal transgénico del mundo. Sin embargo, transcurrieron ocho años antes de que se desarrollaran ratones transgénicos que transmitieran el transgén a sus crías. En 1984, se crearon ratones genéticamente modificados que portaban oncogenes clonados, lo que los predisponía al cáncer. En 1989, se crearon ratones con genes desactivados (ratón knockout). El primer ganado transgénico se produjo en 1985, y los primeros animales en sintetizar proteínas transgénicas en la leche fueron ratones, modificados genéticamente para producir activador tisular del plasminógeno humano en 1987.El primer animal genéticamente modificado que se comercializó fue el GloFish, un pez cebra con un gen fluorescente añadido que le permite brillar en la oscuridad bajo luz ultravioleta. Se lanzó al mercado estadounidense en 2003. El primer animal genéticamente modificado aprobado para uso alimentario fue el salmón AquAdvantage en 2015. El salmón se transformó con un gen regulador de la hormona del crecimiento de un salmón Chinook del Pacífico y un promotor de una faneca oceánica, lo que le permitió crecer durante todo el año en lugar de solo en primavera y verano.

Mamíferos

Algunas quimeras, como el ratón manchado que se muestra, se crean a través de técnicas de modificación genética como el objetivo de genes.
Los mamíferos modificados genéticamente se crean con fines de investigación, producción de productos industriales o terapéuticos, usos agrícolas o para mejorar su salud. También existe un mercado para la creación de mascotas modificadas genéticamente.

Medicina

Los mamíferos son los mejores modelos para las enfermedades humanas, lo que hace que los animales modificados genéticamente sean vitales para el descubrimiento y desarrollo de curas y tratamientos para muchas enfermedades graves. La eliminación de genes responsables de trastornos genéticos humanos permite a los investigadores estudiar el mecanismo de la enfermedad y probar posibles curas. Los ratones modificados genéticamente han sido los mamíferos más utilizados en la investigación biomédica, ya que son económicos y fáciles de manipular. Algunos ejemplos incluyen ratones humanizados creados mediante xenotrasplante de productos génicos humanos, para su uso como híbridos murinos de humano y animal, con el fin de obtener información relevante en el contexto in vivo para comprender la fisiología y las patologías específicas de los humanos. Los cerdos también son un buen objetivo, ya que comparten un tamaño corporal, características anatómicas, fisiología, respuesta fisiopatológica y dieta similares. Los primates no humanos son los organismos modelo más similares a los humanos, pero existe una menor aceptación pública hacia su uso como animales de investigación. En 2009, científicos anunciaron que habían transferido con éxito un gen a una especie de primate (titíes) y producido por primera vez una línea estable de primates transgénicos reproductivos. Su primer objetivo de investigación para estos titíes fue la enfermedad de Parkinson, pero también consideraron la esclerosis lateral amiotrófica y la enfermedad de Huntington.
Cerdo transgénico para la producción de queso
Las proteínas humanas expresadas en mamíferos tienen mayor probabilidad de ser similares a sus contrapartes naturales que las expresadas en plantas o microorganismos. Se ha logrado una expresión estable en ovejas, cerdos, ratas y otros animales. En 2009, se aprobó el primer fármaco biológico humano producido a partir de un animal de este tipo, una cabra. El fármaco, ATryn, es un anticoagulante que reduce la probabilidad de coágulos sanguíneos durante la cirugía o el parto, extraído de la leche de cabra. La alfa-1-antitripsina humana es otra proteína que se utiliza en el tratamiento de humanos con esta deficiencia. Otra área de investigación es la creación de cerdos con mayor capacidad para trasplantes de órganos humanos (xenotrasplantes). Se han modificado genéticamente cerdos para que sus órganos ya no puedan portar retrovirus o se les han aplicado modificaciones para reducir la probabilidad de rechazo. Se están considerando pulmones de cerdos modificados genéticamente para trasplantarlos a humanos. Incluso existe la posibilidad de crear cerdos quiméricos que puedan portar órganos humanos.

Ganadería

El ganado se modifica con la intención de mejorar características económicamente importantes, como la tasa de crecimiento, la calidad de la carne, la composición de la leche, la resistencia a las enfermedades y la supervivencia. Los animales han sido modificados genéticamente para crecer más rápido, ser más sanos y resistir las enfermedades. Las modificaciones también han mejorado la producción de lana de las ovejas y la salud de las ubres de las vacas.Las cabras han sido modificadas genéticamente para producir leche con proteínas de seda resistentes, similares a las de una telaraña. La secuencia genética de la cabra se ha modificado, utilizando cordones umbilicales frescos de cabritos, para codificar la enzima humana lisozima. Los investigadores querían alterar la leche producida por las cabras para que contuviera lisozima y así combatir las bacterias que causan diarrea en humanos.

Enviropig fue una línea de cerdos Yorkshire genéticamente mejorados en Canadá, creada con la capacidad de digerir el fósforo vegetal con mayor eficiencia que los cerdos Yorkshire convencionales. El transgén A, compuesto por un promotor expresado en la glándula parótida murina y el gen de la fitasa de Escherichia coli, se introdujo en el embrión de cerdo mediante microinyección pronuclear. Esto provocó que los cerdos produjeran la enzima fitasa, que descompone el fósforo no digerible, en su saliva. Como resultado, excretan entre un 30 y un 70 % menos de fósforo en el estiércol, dependiendo de la edad y la dieta. Las menores concentraciones de fósforo en la escorrentía superficial reducen el crecimiento de algas, ya que el fósforo es el nutriente limitante para ellas. Dado que las algas consumen grandes cantidades de oxígeno, un crecimiento excesivo puede resultar en zonas muertas para los peces. La financiación del programa Enviropig finalizó en abril de 2012 y, al no encontrar nuevos socios, los cerdos fueron sacrificados. Sin embargo, el material genético se almacenará en el Programa Canadiense de Repositorios de Genética Agrícola. En 2006, se diseñó un cerdo para producir ácidos grasos omega-3 mediante la expresión de un gen de nematodo.

Herman el Toro en exhibición en Naturalis Biodiversity Center
En 1990, se desarrolló el primer bovino transgénico del mundo, el toro Herman. Herman fue modificado genéticamente mediante la microinyección de células embrionarias con el gen humano que codifica la lactoferrina. El Parlamento neerlandés modificó la ley en 1992 para permitir la reproducción de Herman. En 1994 nacieron ocho terneros, todos los cuales heredaron el gen de la lactoferrina. Con los siguientes engendramientos, Herman engendró un total de 83 terneros. La ley neerlandesa exigía que Herman fuera sacrificado al finalizar el experimento. Sin embargo, el entonces ministro de Agricultura neerlandés, Jozias van Aartsen, le concedió un indulto siempre que no tuviera más crías, tras la defensa pública y científica. Junto con vacas clonadas llamadas Holly y Belle, vivió su jubilación en Naturalis, el Museo Nacional de Historia Natural de Leiden. El 2 de abril de 2004, Herman fue sacrificado por veterinarios de la Universidad de Utrecht debido a que padecía osteoartritis. Al momento de su muerte, Herman era uno de los toros más antiguos de los Países Bajos. Su piel ha sido preservada y montada por taxidermistas y se exhibe permanentemente en Naturalis. Se dice que representa el inicio de una nueva era en la relación del hombre con la naturaleza, un ícono del progreso científico y el consiguiente debate público sobre estos temas.En octubre de 2017, científicos chinos anunciaron que utilizaron la tecnología de edición genética CRISPR para crear una línea de cerdos con una mejor regulación de la temperatura corporal, lo que resultó en aproximadamente un 24 % menos de grasa corporal que el ganado típico.Investigadores han desarrollado ganado lechero transgénico para que crezca sin cuernos (a veces llamado "mocho"), lo cual puede causar lesiones a los ganaderos y a otros animales. Se extrajo ADN del genoma del ganado Red Angus, conocido por suprimir el crecimiento de los cuernos, y se insertó en células de un toro Holstein de élite llamado "Randy". Cada descendiente será un clon de Randy, pero sin sus cuernos, y sus crías también deberían ser sin cuernos. En 2011, científicos chinos generaron vacas lecheras modificadas genéticamente con genes humanos para producir leche similar a la leche materna. Esto podría beneficiar a las madres que no pueden producir leche materna, pero desean que sus hijos la tomen en lugar de leche de fórmula. Los investigadores afirman que estas vacas transgénicas son idénticas a las vacas normales. Dos meses después, científicos argentinos presentaron a Rosita, una vaca transgénica que incorpora dos genes humanos, para producir leche con propiedades similares a la leche materna. En 2012, investigadores de Nueva Zelanda también desarrollaron una vaca genéticamente modificada que producía leche sin alérgenos.En 2016, Jayne Raper y su equipo anunciaron la primera vaca transgénica tripanotolerante del mundo. Este equipo, integrado por el Instituto Internacional de Investigación Ganadera, el Colegio Rural de Escocia, el Centro de Genética y Sanidad Ganadera Tropical del Instituto Roslin y la Universidad de la Ciudad de Nueva York, anunció el nacimiento de un toro boran keniano que ya había tenido dos crías. Tumaini, cuyo nombre deriva de la palabra suajili para "esperanza", porta un factor tripanolítico de un babuino mediante CRISPR/Cas9.

Research

Los científicos han modificado genéticamente varios organismos, incluyendo algunos mamíferos, para incluir la proteína verde fluorescente (GFP) con fines de investigación. La GFP y otros genes indicadores similares permiten una fácil visualización y localización de los productos de la modificación genética. Se han criado cerdos fluorescentes para estudiar trasplantes de órganos humanos, la regeneración de células fotorreceptoras oculares y otros temas. En 2011, se crearon gatos verdes fluorescentes para encontrar terapias contra el VIH/SIDA y otras enfermedades, ya que el virus de la inmunodeficiencia felina (VIF) está relacionado con el VIH. Investigadores de la Universidad de Wyoming han desarrollado una forma de incorporar genes de araña que hilan la seda en cabras, lo que les permite extraer la proteína de seda de la leche de estas para diversas aplicaciones.

Conservación

Se ha propuesto la modificación genética del virus del mixoma para conservar los conejos silvestres europeos en la península Ibérica y contribuir a su regulación en Australia. Para proteger a la especie ibérica de enfermedades virales, se modificó genéticamente el virus del mixoma para inmunizar a los conejos, mientras que en Australia se modificó genéticamente para reducir la fertilidad en la población de conejos australianos. También se ha sugerido que la ingeniería genética podría utilizarse para rescatar animales de la extinción. Esto implica modificar el genoma de un pariente vivo cercano para que se parezca al extinto, y actualmente se está intentando con la paloma migratoria. Se han añadido genes asociados con el mamut lanudo al genoma de un elefante africano, aunque el investigador principal afirma no tener intención de utilizar elefantes vivos.

Humanos

La terapia génica utiliza virus modificados genéticamente para introducir genes que pueden curar enfermedades en humanos. Aunque la terapia génica es relativamente nueva, ha tenido algunos éxitos. Se ha utilizado para tratar trastornos genéticos como la inmunodeficiencia combinada grave y la amaurosis congénita de Leber. También se están desarrollando tratamientos para otras enfermedades actualmente incurables, como la fibrosis quística, la anemia de células falciformes, la enfermedad de Parkinson, el cáncer, la diabetes, las cardiopatías y la distrofia muscular. Estos tratamientos solo afectan a las células somáticas, lo que significa que cualquier cambio no sería hereditario. La terapia génica de línea germinal hace que cualquier cambio sea hereditario, lo que ha suscitado inquietud en la comunidad científica. En 2015, se utilizó CRISPR para editar el ADN de embriones humanos no viables. En noviembre de 2018, He Jiankui anunció que había editado los genomas de dos embriones humanos para intentar desactivar el gen CCR5, que codifica un receptor que el VIH utiliza para entrar en las células. Dijo que las gemelas Lulu y Nana habían nacido unas semanas antes y que portaban copias funcionales del CCR5, además de un CCR5 desactivado (mosaicismo), y que aún eran vulnerables al VIH. El trabajo fue ampliamente condenado por ser poco ético, peligroso y prematuro.

Fish

Los peces modificados genéticamente se utilizan para la investigación científica, como mascotas y como fuente de alimento. La acuicultura es una industria en crecimiento, que actualmente proporciona más de la mitad del pescado que se consume en todo el mundo. Mediante la ingeniería genética, es posible aumentar las tasas de crecimiento, reducir la ingesta de alimentos, eliminar propiedades alergénicas, aumentar la tolerancia al frío y proporcionar resistencia a las enfermedades.

Detectar la contaminación

Los peces también pueden utilizarse para detectar la contaminación acuática o funcionar como biorreactores. Varios grupos han estado desarrollando peces cebra para detectar la contaminación mediante la unión de proteínas fluorescentes a genes activados por la presencia de contaminantes. Los peces brillarán y podrán utilizarse como sensores ambientales.

Mascotas

El GloFish es una marca de pez cebra fluorescente modificado genéticamente con brillantes colores rojo, verde y naranja. Fue desarrollado originalmente por uno de los grupos para detectar la contaminación, pero ahora forma parte del comercio de peces ornamentales, convirtiéndose en el primer animal genéticamente modificado en estar disponible como mascota cuando se lanzó a la venta en 2003.

Research

Los peces transgénicos se utilizan ampliamente en la investigación básica en genética y desarrollo. Dos especies de peces, el pez cebra y el medaka, son las más comúnmente modificadas, ya que poseen coriones (membranas en el huevo) ópticamente transparentes, se desarrollan rápidamente y el embrión unicelular es fácil de ver y microinyectar con ADN transgénico. Los peces cebra son organismos modelo para procesos de desarrollo, regeneración, genética, comportamiento, mecanismos de enfermedades y pruebas de toxicidad. Su transparencia permite a los investigadores observar las etapas de desarrollo, las funciones intestinales y el crecimiento tumoral. La generación de protocolos transgénicos (organismo completo, específicos de células o tejidos, marcados con genes reporteros) ha aumentado el nivel de información obtenida mediante el estudio de estos peces.

Crecimiento

Se han desarrollado peces transgénicos con promotores que impulsan una sobreproducción de la hormona de crecimiento "para todos los peces" para su uso en la industria acuícola, con el fin de acelerar el desarrollo y reducir potencialmente la presión pesquera sobre las poblaciones silvestres. Esto ha resultado en una mejora drástica del crecimiento en varias especies, como el salmón, la trucha y la tilapia.AquaBounty Technologies ha producido un salmón que madura en la mitad del tiempo que el salmón salvaje. Se trata de un salmón del Atlántico con un gen de salmón Chinook (Oncorhynchus tshawytscha) insertado. Esto le permite producir hormonas de crecimiento durante todo el año, a diferencia del salmón salvaje, que solo produce la hormona durante una parte del año. El pez también tiene un segundo gen insertado, proveniente de la faneca oceánica, que actúa como un interruptor para la hormona. La faneca oceánica también posee proteínas anticongelantes en la sangre, que le permiten sobrevivir en aguas cercanas al punto de congelación y continuar su desarrollo. Un salmón salvaje tarda entre 24 y 30 meses en alcanzar el tamaño comercial (4-6 kg), mientras que los productores del salmón transgénico afirman que solo necesita 18 meses para alcanzar ese tamaño. En noviembre de 2015, la FDA de EE. UU. aprobó el salmón AquAdvantage para su producción, venta y consumo comercial, el primer alimento transgénico no vegetal en comercializarse.AquaBounty afirma que, para evitar que los peces modificados genéticamente se reproduzcan accidentalmente con salmón salvaje, todos los peces serán hembras y estériles reproductivamente, aunque un pequeño porcentaje de las hembras podría permanecer fértil. Algunos detractores del salmón modificado genéticamente lo han apodado el "pez Frankenstein".

Insectos

Research

En la investigación biológica, las moscas de la fruta transgénicas (Drosophila melanogaster) son organismos modelo utilizados para estudiar los efectos de los cambios genéticos en el desarrollo. Las moscas de la fruta suelen preferirse a otros animales debido a su corto ciclo de vida y sus bajos requisitos de mantenimiento. Además, su genoma es relativamente simple en comparación con el de muchos vertebrados, con típicamente una sola copia de cada gen, lo que facilita el análisis fenotípico. La Drosophila se ha utilizado para estudiar la genética y la herencia, el desarrollo embrionario, el aprendizaje, el comportamiento y el envejecimiento. Los transposones (en particular los elementos P) están bien desarrollados en la Drosophila y proporcionaron un método temprano para añadir transgenes a su genoma, aunque este método ha sido reemplazado por técnicas de edición genética más modernas.

Control de la población

Debido a su importancia para la salud humana, los científicos buscan maneras de controlar los mosquitos mediante ingeniería genética. Se han desarrollado mosquitos resistentes a la malaria en el laboratorio mediante la inserción de un gen que reduce el desarrollo del parásito y el uso de endonucleasas autodirigidas para propagar rápidamente ese gen en la población masculina (lo que se conoce como impulsión genética). Este método se ha llevado aún más lejos al sustituirlo por un gen letal. En ensayos clínicos, las poblaciones de mosquitos Aedes aegypti, el principal portador del dengue y el virus del Zika, se redujeron entre un 80 % y un 90 %. Otro enfoque consiste en utilizar la técnica del insecto estéril, mediante la cual los machos modificados genéticamente para ser estériles compiten con los machos viables, para reducir el número de poblaciones.Otras plagas de insectos que constituyen blancos atractivos son las polillas. Las polillas dorso de diamante causan daños de entre 4 y 5 mil millones de dólares estadounidenses al año en todo el mundo. El enfoque es similar al de los mosquitos: se liberarán machos transformados con un gen que impide que las hembras alcancen la madurez. Se sometieron a pruebas de campo en 2017. Anteriormente, se han liberado polillas genéticamente modificadas en pruebas de campo. Una cepa de gusano rosado esterilizado con radiación se modificó genéticamente para expresar una proteína fluorescente roja, lo que facilita su monitoreo por parte de los investigadores.

Industria

El gusano de seda, la larva del Bombyx mori, es un insecto de gran importancia económica en la sericultura. Los científicos están desarrollando estrategias para mejorar la calidad y cantidad de la seda. También existe la posibilidad de utilizar la maquinaria productora de seda para producir otras proteínas valiosas. Entre las proteínas expresadas por los gusanos de seda se incluyen la albúmina sérica humana, la cadena α del colágeno humano, el anticuerpo monoclonal murino y la N-glicanasa. Se han creado gusanos de seda que producen seda de araña, una seda más resistente pero extremadamente difícil de cosechar, e incluso sedas novedosas.

Aves

Los intentos de producir aves genéticamente modificadas comenzaron antes de 1980. Se han modificado genéticamente pollos con diversos fines, como estudiar el desarrollo embrionario, prevenir la transmisión de la gripe aviar y obtener información evolutiva mediante ingeniería inversa para recrear fenotipos similares a los de los dinosaurios. Un pollo transgénico que produce en su huevo el fármaco Kanuma, una enzima que trata una enfermedad rara, obtuvo la aprobación regulatoria en 2015.

Control de enfermedades

Un posible uso de las aves transgénicas podría ser la reducción de la propagación de enfermedades aviares. Investigadores del Instituto Roslin han producido una cepa de pollos transgénicos (Gallus gallus domesticus) que no transmite la gripe aviar a otras aves; sin embargo, estas aves siguen siendo susceptibles a contraerla. La modificación genética consiste en una molécula de ARN que impide la reproducción del virus imitando la región del genoma del virus de la gripe que controla la replicación. Se le conoce como "señuelo" porque desvía la enzima del virus de la gripe, la polimerasa, de las funciones necesarias para la replicación del virus.

Información evolutiva

Un equipo de genetistas, dirigido por el paleontólogo Jack Horner, de la Universidad de Montana, busca modificar un pollo para que exprese varias características presentes en los maniraptores ancestrales, pero ausentes en las aves modernas, como dientes y una cola larga, creando lo que se ha denominado un "pollosaurio". Proyectos paralelos han producido embriones de pollo con una anatomía de cráneo, patas y pies similar a la de los dinosaurios. En 2023, Horner afirmó haber logrado crear colas de pollo más largas y expresó cautela respecto a futuros desarrollos.

Sexo en ovo

La edición genética es una herramienta posible en la industria de la cría de gallinas ponedoras para ofrecer una alternativa al sacrificio de pollitos. Con esta tecnología, las gallinas reproductoras reciben un marcador genético que solo se transmite a los machos. Estos machos pueden identificarse durante la incubación y retirarse del suministro de huevos, de modo que solo eclosionen las hembras. Por ejemplo, la empresa emergente israelí eggXYt utiliza CRISPR para dotar a los huevos machos de un biomarcador que los hace brillar en determinadas condiciones. Cabe destacar que la gallina ponedora resultante y los huevos que produce no están modificados genéticamente. El Director General de Salud y Seguridad Alimentaria de la Unión Europea ha confirmado que los huevos producidos de esta manera pueden comercializarse, aunque no están disponibles comercialmente a partir de junio de 2023.

Anfibios

Los primeros experimentos que desarrollaron con éxito anfibios transgénicos hasta convertirlos en embriones comenzaron en la década de 1980 con Xenopus laevis. Posteriormente, en 2006, se produjeron ajolotes transgénicos de línea germinal en Ambystoma mexicanum mediante una técnica llamada transgénesis mediada por I-SceI, que utiliza la enzima endonucleasa I-SceI, capaz de descomponer el ADN en sitios específicos y permitir la inserción de ADN extraño en el genoma. Tanto Xenopus laevis como Ambystoma mexicanum son organismos modelo utilizados para estudiar la regeneración. Además, se han producido líneas transgénicas en otras salamandras, como el tritón japonés Pyrrhogaster y Pleurodeles watl. Las ranas modificadas genéticamente, en particular Xenopus laevis y Xenopus tropicalis, se utilizan en biología del desarrollo. Las ranas transgénicas también pueden utilizarse como sensores de contaminación, especialmente para sustancias químicas disruptoras endocrinas. Existen propuestas para utilizar la ingeniería genética para controlar los sapos de caña en Australia. Muchas líneas de X. laevis transgénicas se utilizan para estudiar la inmunología y comprender cómo las bacterias y los virus causan enfermedades infecciosas en el Recurso de Investigación de X. laevis para Inmunobiología (XLRRI) del Centro Médico de la Universidad de Rochester. Los anfibios también pueden utilizarse para estudiar y validar vías de señalización regenerativa, como la vía Wnt. La capacidad de los anfibios para cicatrizar heridas tiene muchas aplicaciones prácticas y podría sentar las bases para la reparación sin cicatrices en la cirugía plástica humana, como el tratamiento de la piel de pacientes con quemaduras.Los anfibios como X. laevis son adecuados para la embriología experimental debido a sus grandes embriones, que pueden manipularse y observarse fácilmente durante su desarrollo. En experimentos con ajolotes, se suelen utilizar mutantes con piel pigmentada blanca, ya que su piel semitransparente proporciona un método eficiente de visualización y seguimiento de proteínas marcadas con fluorescencia, como la GFP. Los anfibios no siempre son ideales en cuanto a los recursos necesarios para producir animales modificados genéticamente; además de su ciclo generacional de uno a dos años, Xenopus laevis puede considerarse menos adecuado para experimentos transgénicos debido a su genoma pseudotetraploide. Debido a que los mismos genes aparecen varias veces en el genoma, la probabilidad de que los experimentos de mutagénesis funcionen es menor. Los métodos actuales de congelación y descongelación de esperma de ajolote lo vuelven inoperante, lo que significa que las líneas transgénicas deben mantenerse en instalaciones, lo que puede resultar bastante costoso. La producción de ajolotes transgénicos presenta muchos desafíos debido al gran tamaño de su genoma. Los métodos actuales para generar ajolotes transgénicos se limitan a la integración aleatoria del casete transgénico en el genoma, lo que puede provocar una expresión desigual o el silenciamiento. La duplicación de genes también dificulta la generación de genes knockout eficientes.A pesar de su costo, los ajolotes poseen capacidades regenerativas únicas y, en última instancia, brindan información útil para comprender la regeneración tisular, ya que pueden regenerar sus extremidades, médula espinal, piel, corazón, pulmones y otros órganos. Los ajolotes mutantes naturales, como la cepa blanca, que se utilizan a menudo en investigación, presentan una mutación transcripcional en el locus del gen Edn3. A diferencia de otros organismos modelo, las primeras células marcadas con fluorescencia en ajolotes fueron células musculares diferenciadas en lugar de embriones. En estos experimentos iniciales, a principios de la década de 2000, los científicos pudieron visualizar la regeneración de células musculares en la cola del ajolote mediante una técnica de microinyección, pero no fue posible rastrear las células durante todo el proceso de regeneración debido a las condiciones excesivamente severas que causaron la muerte celular prematura en las células marcadas. Si bien el proceso de producción de ajolotes transgénicos fue un desafío, los científicos lograron marcar las células durante períodos más prolongados mediante una técnica de transfección de plásmidos, que consiste en inyectar ADN en las células mediante un pulso eléctrico en un proceso llamado electroporación. Se cree que la transfección de células de ajolote es más difícil debido a la composición de la matriz extracelular (MEC). Esta técnica permite marcar las células de la médula espinal y es fundamental para estudiar la regeneración de las extremidades en muchas otras células; se ha utilizado para estudiar el papel del sistema inmunitario en la regeneración. Mediante métodos de inactivación genética, los científicos pueden identificar regiones específicas del ADN mediante técnicas como CRISPR/Cas9 para comprender la función de ciertos genes en función de la ausencia del gen de interés. Por ejemplo, la inactivación del gen Sox2 confirma el papel de esta región en la amplificación de células madre neuronales en el ajolote. La tecnología para realizar inactivaciones genéticas condicionales más complejas, o inactivaciones condicionales que otorgan al científico control espaciotemporal del gen, aún no es adecuada para los ajolotes. Sin embargo, la investigación en este campo continúa desarrollándose y se ve facilitada por la reciente secuenciación del genoma y los recursos creados para los científicos, incluyendo portales de datos que contienen conjuntos de referencia del genoma y el transcriptoma del ajolote para identificar ortólogos.

Nematodos

El nematodo Caenorhabditis elegans es uno de los principales organismos modelo para la investigación en biología molecular. La interferencia de ARN (ARNi) se descubrió en C. elegans y podía inducirse simplemente alimentándolo con bacterias modificadas para expresar ARN bicatenario. Además, es relativamente fácil producir nematodos transgénicos estables, lo que, junto con la ARNi, constituye las principales herramientas utilizadas para el estudio de sus genes. El uso más común de los nematodos transgénicos ha sido el estudio de la expresión y localización génica mediante la unión de genes reporteros. Los transgenes también pueden combinarse con la ARNi para rescatar fenotipos, modificarse para estudiar la función génica, visualizarse en tiempo real a medida que las células se desarrollan o utilizarse para controlar la expresión en diferentes tejidos o etapas del desarrollo. Los nematodos transgénicos se han utilizado para estudiar virus, toxicología y enfermedades, así como para detectar contaminantes ambientales.

Otros

Se han desarrollado sistemas para crear organismos transgénicos en una amplia variedad de animales. Se ha descubierto el gen responsable del albinismo en los pepinos de mar y se ha utilizado para diseñar pepinos de mar blancos, un manjar excepcional. Esta tecnología también abre la puerta a la investigación de los genes responsables de algunas de las características más inusuales de los pepinos, como la hibernación en verano, la evisceración de sus intestinos y la disolución de sus cuerpos al morir. Los gusanos planos tienen la capacidad de regenerarse a partir de una sola célula. Hasta 2017 no existía una forma efectiva de transformarlos, lo que dificultaba la investigación. Mediante microinyección y radiación, los científicos han creado los primeros gusanos planos modificados genéticamente. El gusano de cerdas, un anélido marino, ha sido modificado. Resulta interesante debido a la sincronización de su ciclo reproductivo con las fases lunares, su capacidad de regeneración y su lenta tasa de evolución. Los cnidarios como la hidra y la anémona de mar Nematostella vectensis son organismos modelo atractivos para estudiar la evolución de la inmunidad y ciertos procesos de desarrollo. Otros organismos modificados genéticamente incluyen caracoles, gecos, tortugas, cangrejos de río, ostras, camarones, almejas, abulones y esponjas.Los productos alimenticios derivados de animales modificados genéticamente (GM) aún no han entrado en el mercado europeo. Sin embargo, el debate en curso sobre los cultivos GM [1] y el creciente debate sobre la seguridad y la ética de los alimentos y productos farmacéuticos producidos tanto por animales como por plantas GM han suscitado opiniones diversas en distintos sectores de la sociedad.
Bienestar animal y recursos éticos

Ética

La modificación genética y la edición genómica tienen potencial para el futuro, pero las decisiones sobre el uso de estas tecnologías deben basarse no solo en lo posible, sino también en lo éticamente razonable. Principios como la integridad animal, la naturalidad, la identificación de riesgos y el bienestar animal son ejemplos de factores éticamente importantes que deben tenerse en cuenta, y que también influyen en la percepción pública y las decisiones regulatorias de las autoridades.La utilidad de extrapolar datos animales a humanos ha sido cuestionada. Esto ha llevado a los comités de ética a adoptar los principios de las cuatro R (Reducción, Refinamiento, Reemplazo y Responsabilidad) como guía para la toma de decisiones en materia de experimentación animal. Sin embargo, el abandono total de los animales de laboratorio aún no ha sido posible, y se necesita más investigación para desarrollar una hoja de ruta con alternativas sólidas antes de que su uso pueda suspenderse por completo.

Referencias

  1. ^ a b Forabosco F, Löhmus M, Rydhmer L, Sundström LF (May 2013). "Genetically modified farm animals and fish in agriculture: A review". Livestock Science. 153 (1–3): 1–9. doi:10.1016/j.livsci.2013.01.002.
  2. ^ a b Murray, Joo (20). Genetically modified animals Archived 2019-10-13 at the Wayback Machine. Canada: Brainwaving
  3. ^ Nicholl DS (2008-05-29). An Introduction to Genetic Engineering. Cambridge University Press. p. 34. ISBN 978-1-139-47178-7.
  4. ^ Liang J, Luo Y, Zhao H (2011). "Synthetic biology: putting synthesis into biology". Wiley Interdisciplinary Reviews: Systems Biology and Medicine. 3 (1): 7–20. doi:10.1002/wsbm.104. PMC 3057768. PMID 21064036.
  5. ^ Berg P, Mertz JE (January 2010). "Personal reflections on the origins and emergence of recombinant DNA technology". Genetics. 184 (1): 9–17. doi:10.1534/genetics.109.112144. PMC 2815933. PMID 20061565.
  6. ^ Chen I, Dubnau D (March 2004). "DNA uptake during bacterial transformation". Nature Reviews. Microbiology. 2 (3): 241–9. doi:10.1038/nrmicro844. PMID 15083159. S2CID 205499369.
  7. ^ Jaenisch R, Mintz B (April 1974). "Simian virus 40 DNA sequences in DNA of healthy adult mice derived from preimplantation blastocysts injected with viral DNA". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 71 (4): 1250–4. Bibcode:1974PNAS...71.1250J. doi:10.1073/pnas.71.4.1250. PMC 388203. PMID 4364530.
  8. ^ National Research Council (US) Committee on Identifying and Assessing Unintended Effects of Genetically Engineered Foods on Human Health (2004-01-01). Methods and Mechanisms for Genetic Manipulation of Plants, Animals, and Microorganisms. National Academies Press (US).
  9. ^ Setlow JK (2002-10-31). Genetic Engineering: Principles and Methods. Springer Science & Business Media. p. 109. ISBN 978-0-306-47280-0.
  10. ^ Grizot S, Smith J, Daboussi F, Prieto J, Redondo P, Merino N, et al. (September 2009). "Efficient targeting of a SCID gene by an engineered single-chain homing endonuclease". Nucleic Acids Research. 37 (16): 5405–19. doi:10.1093/nar/gkp548. PMC 2760784. PMID 19584299.
  11. ^ Gao H, Smith J, Yang M, Jones S, Djukanovic V, Nicholson MG, et al. (January 2010). "Heritable targeted mutagenesis in maize using a designed endonuclease". The Plant Journal. 61 (1): 176–87. doi:10.1111/j.1365-313X.2009.04041.x. PMID 19811621.
  12. ^ Townsend JA, Wright DA, Winfrey RJ, Fu F, Maeder ML, Joung JK, et al. (May 2009). "High-frequency modification of plant genes using engineered zinc-finger nucleases". Nature. 459 (7245): 442–5. Bibcode:2009Natur.459..442T. doi:10.1038/nature07845. PMC 2743854. PMID 19404258.
  13. ^ Shukla VK, Doyon Y, Miller JC, DeKelver RC, Moehle EA, Worden SE, et al. (May 2009). "Precise genome modification in the crop species Zea mays using zinc-finger nucleases". Nature. 459 (7245): 437–41. Bibcode:2009Natur.459..437S. doi:10.1038/nature07992. PMID 19404259. S2CID 4323298.
  14. ^ Christian M, Cermak T, Doyle EL, Schmidt C, Zhang F, Hummel A, et al. (October 2010). "Targeting DNA double-strand breaks with TAL effector nucleases". Genetics. 186 (2): 757–61. doi:10.1534/genetics.110.120717. PMC 2942870. PMID 20660643.
  15. ^ Li T, Huang S, Jiang WZ, Wright D, Spalding MH, Weeks DP, et al. (January 2011). "TAL nucleases (TALNs): hybrid proteins composed of TAL effectors and FokI DNA-cleavage domain". Nucleic Acids Research. 39 (1): 359–72. doi:10.1093/nar/gkq704. PMC 3017587. PMID 20699274.
  16. ^ Esvelt KM, Wang HH (2013). "Genome-scale engineering for systems and synthetic biology". Molecular Systems Biology. 9: 641. doi:10.1038/msb.2012.66. PMC 3564264. PMID 23340847.
  17. ^ Tan WS, Carlson DF, Walton MW, Fahrenkrug SC, Hackett PB (2012). "Precision editing of large animal genomes". Advances in Genetics Volume 80. Vol. 80. pp. 37–97. doi:10.1016/B978-0-12-404742-6.00002-8. ISBN 978-0-12-404742-6. PMC 3683964. PMID 23084873.
  18. ^ a b Malzahn A, Lowder L, Qi Y (2017-04-24). "Plant genome editing with TALEN and CRISPR". Cell & Bioscience. 7 21. doi:10.1186/s13578-017-0148-4. PMC 5404292. PMID 28451378.
  19. ^ "How CRISPR is Spreading Through the Animal Kingdom". www.pbs.org. 23 May 2018. Retrieved 2018-12-20.
  20. ^ Clive Root (2007). Domestication. Greenwood Publishing Groups.
  21. ^ Jackson DA, Symons RH, Berg P (October 1972). "Biochemical method for inserting new genetic information into DNA of Simian Virus 40: circular SV40 DNA molecules containing lambda phage genes and the galactose operon of Escherichia coli". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 69 (10): 2904–9. Bibcode:1972PNAS...69.2904J. doi:10.1073/pnas.69.10.2904. PMC 389671. PMID 4342968.
  22. ^ M. K. Sateesh (25 August 2008). Bioethics And Biosafety. I. K. International Pvt Ltd. pp. 456–. ISBN 978-81-906757-0-3. Retrieved 27 March 2013.
  23. ^ Jaenisch, R. and Mintz, B. (1974) Simian virus 40 DNA sequences in DNA of healthy adult mice derived from preimplantation blastocysts injected with viral DNA. Proc. Natl. Acad. 71(4): 1250–54 [1]
  24. ^ "'Any idiot can do it.' Genome editor CRISPR could put mutant mice in everyone's reach". Science | AAAS. 2016-11-02. Retrieved 2016-12-02.
  25. ^ Gordon JW, Ruddle FH (December 1981). "Integration and stable germ line transmission of genes injected into mouse pronuclei". Science. 214 (4526): 1244–6. Bibcode:1981Sci...214.1244G. doi:10.1126/science.6272397. PMID 6272397.
  26. ^ Costantini F, Lacy E (November 1981). "Introduction of a rabbit beta-globin gene into the mouse germ line". Nature. 294 (5836): 92–4. Bibcode:1981Natur.294...92C. doi:10.1038/294092a0. PMID 6945481. S2CID 4371351.
  27. ^ Hanahan D, Wagner EF, Palmiter RD (September 2007). "The origins of oncomice: a history of the first transgenic mice genetically engineered to develop cancer". Genes & Development. 21 (18): 2258–70. doi:10.1101/gad.1583307. PMID 17875663.
  28. ^ Brophy B, Smolenski G, Wheeler T, Wells D, L'Huillier P, Laible G (February 2003). "Cloned transgenic cattle produce milk with higher levels of beta-casein and kappa-casein". Nature Biotechnology. 21 (2): 157–62. doi:10.1038/nbt783. PMID 12548290. S2CID 45925486.
  29. ^ Clark AJ (July 1998). "The mammary gland as a bioreactor: expression, processing, and production of recombinant proteins". Journal of Mammary Gland Biology and Neoplasia. 3 (3): 337–50. doi:10.1023/a:1018723712996. PMID 10819519.
  30. ^ Gordon K, Lee E, Vitale JA, Smith AE, Westphal H, Hennighausen L (1987). "Production of human tissue plasminogen activator in transgenic mouse milk. 1987". Biotechnology. 24 (11): 425–8. doi:10.1038/nbt1187-1183. PMID 1422049. S2CID 3261903.
  31. ^ Vàzquez-Salat N, Salter B, Smets G, Houdebine LM (2012-11-01). "The current state of GMO governance: are we ready for GM animals?". Biotechnology Advances. Special issue on ACB 2011. 30 (6): 1336–43. doi:10.1016/j.biotechadv.2012.02.006. PMID 22361646.
  32. ^ "CNN.com - Glowing fish to be first genetically changed pet - Nov. 21, 2003". CNN. Retrieved 2018-12-25.
  33. ^ "Aquabounty Cleared to Sell Salmon in USA for Commercial Purposes". FDA. 2019-06-19. Archived from the original on December 31, 2012.
  34. ^ Bodnar A (October 2010). "Risk Assessment and Mitigation of AquAdvantage Salmon" (PDF). ISB News Report. Archived from the original (PDF) on 2021-03-08. Retrieved 2018-12-25.
  35. ^ Rudinko, Larisa (20). Guidance for industry. USA: Center for veterinary medicine Link.
  36. ^ Stripecke R, Münz C, Schuringa JJ, Bissig KD, Soper B, Meeham T, et al. (July 2020). "Innovations, challenges, and minimal information for standardization of humanized mice". EMBO Molecular Medicine. 12 (7): e8662. doi:10.15252/emmm.201708662. PMC 7338801. PMID 32578942.
  37. ^ a b Perleberg C, Kind A, Schnieke A (January 2018). "Genetically engineered pigs as models for human disease". Disease Models & Mechanisms. 11 (1): dmm030783. doi:10.1242/dmm.030783. PMC 5818075. PMID 29419487.
  38. ^ Sato K, Sasaki E (February 2018). "Genetic engineering in nonhuman primates for human disease modeling". Journal of Human Genetics. 63 (2): 125–131. doi:10.1038/s10038-017-0351-5. PMC 8075926. PMID 29203824.
  39. ^ Sasaki E, Suemizu H, Shimada A, Hanazawa K, Oiwa R, Kamioka M, et al. (May 2009). "Generation of transgenic non-human primates with germline transmission". Nature. 459 (7246): 523–7. Bibcode:2009Natur.459..523S. doi:10.1038/nature08090. PMID 19478777. S2CID 4404433.
  40. ^ Schatten G, Mitalipov S (May 2009). "Developmental biology: Transgenic primate offspring". Nature. 459 (7246): 515–6. Bibcode:2009Natur.459..515S. doi:10.1038/459515a. PMC 2777739. PMID 19478771.
  41. ^ Cyranoski D (May 2009). "Marmoset model takes centre stage". Nature. 459 (7246): 492. doi:10.1038/459492a. PMID 19478751.
  42. ^ Britt Erickson, 10 February 2009, for Chemical & Engineering News. FDA Approves Drug From Transgenic Goat Milk Accessed 6 October 2012
  43. ^ Spencer LT, Humphries JE, Brantly ML (May 2005). "Antibody response to aerosolized transgenic human alpha1-antitrypsin". The New England Journal of Medicine. 352 (19): 2030–1. doi:10.1056/nejm200505123521923. PMID 15888711.
  44. ^ Zimmer C (15 October 2015). "Editing of Pig DNA May Lead to More Organs for People (Published 2015)". The New York Times. Archived from the original on 2022-12-16.
  45. ^ Zeyland J, Gawrońska B, Juzwa W, Jura J, Nowak A, Słomski R, et al. (August 2013). "Transgenic pigs designed to express human α-galactosidase to avoid humoral xenograft rejection". Journal of Applied Genetics. 54 (3): 293–303. doi:10.1007/s13353-013-0156-y. PMC 3720986. PMID 23780397.
  46. ^ GTKO study conducted by the National Heart, Lung, and Blood Institute of the U.S. National Institutes of Health
  47. ^ New life for pig-to-human transplants
  48. ^ United Therapeutics considering pig-lungs for transplant into humans
  49. ^ Wu J, Platero-Luengo A, Sakurai M, Sugawara A, Gil MA, Yamauchi T, et al. (January 2017). "Interspecies Chimerism with Mammalian Pluripotent Stem Cells". Cell. 168 (3): 473–486.e15. doi:10.1016/j.cell.2016.12.036. PMC 5679265. PMID 28129541.
  50. ^ Lai L, Kang JX, Li R, Wang J, Witt WT, Yong HY, et al. (April 2006). "Generation of cloned transgenic pigs rich in omega-3 fatty acids". Nature Biotechnology. 24 (4): 435–6. doi:10.1038/nbt1198. PMC 2976610. PMID 16565727.
  51. ^ Tucker I (2018-06-24). "Genetically modified animals". The Guardian. ISSN 0261-3077. Retrieved 2018-12-21.
  52. ^ Zyga L (2010). "Scientist bred goats that produce spider silk". Phys.org. Archived from the original on 30 April 2015.
  53. ^ "These GMO Goats Could Save Lives. Fear and Confusion Prevent It". Undark. Retrieved 2018-10-02.
  54. ^ a b c d Guelph (2010). Enviropig Archived 2016-01-30 at the Wayback Machine. Canada:
  55. ^ Schimdt, Sarah. "Genetically engineered pigs killed after funding ends", Postmedia News, 22 June 2012. Accessed 31 July 2012.
  56. ^ Golovan SP, Meidinger RG, Ajakaiye A, Cottrill M, Wiederkehr MZ, Barney DJ, et al. (August 2001). "Pigs expressing salivary phytase produce low-phosphorus manure". Nature Biotechnology. 19 (8): 741–5. doi:10.1038/90788. PMID 11479566. S2CID 52853680.
  57. ^ a b Canada. "Enviropig – Environmental Benefits | University of Guelph". Uoguelph.ca. Archived from the original on 2017-10-30.
  58. ^ Leung, Wendy. University of Guelph left foraging for Enviropig funding, The Globe and Mail, Apr. 2, 2012. Accessed July 31, 2012.
  59. ^ Schimdt, Sarah. Genetically engineered pigs killed after funding ends, Postmedia News, June 22, 2012. Accessed July 31, 2012.
  60. ^ Lai L, Kang JX, Li R, Wang J, Witt WT, Yong HY, et al. (April 2006). "Generation of cloned transgenic pigs rich in omega-3 fatty acids" (PDF). Nature Biotechnology. 24 (4): 435–6. doi:10.1038/nbt1198. PMC 2976610. PMID 16565727. Archived from the original (PDF) on 2009-08-16.
  61. ^ "Herman the bull - Herman becomes a father. "Biotech Notes."". U.S. Department of Agriculture. 1994. Archived from the original on 2008-12-03.
  62. ^ a b c d "Herman the bull heads to greener pastures". Expatica News. April 2, 2004. Archived from the original on July 29, 2014. Retrieved December 24, 2018.
  63. ^ a b c "Herman the Bull stabled in Naturalis". Naturalis. 2008. Retrieved 3 January 2009.
  64. ^ "CRISPR Bacon: Chinese Scientists Create Genetically Modified Low-Fat Pigs". NPR.org. 2017-10-23.
  65. ^ Hall, M. (April 28, 2013). "Scientists design 'health and safety' cow with no horns". The Telegraph. Retrieved December 18, 2015.
  66. ^ Gray R (2011). "Genetically modified cows produce 'human' milk". The Telegraph. Archived from the original on April 4, 2011.
  67. ^ Classical Medicine Journal (14 April 2010). "Genetically modified cows producing human milk". Archived from the original on 6 November 2014.
  68. ^ a b Yapp R (11 June 2011). "Scientists create cow that produces 'human' milk". The Daily Telegraph. London. Retrieved 15 June 2012.
  69. ^ Classical Medicine Journal (14 April 2010). "Genetically modified cows producing human milk". Archived from the original on 2014-11-06.
  70. ^ Jabed A, Wagner S, McCracken J, Wells DN, Laible G (October 2012). "Targeted microRNA expression in dairy cattle directs production of β-lactoglobulin-free, high-casein milk". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (42): 16811–6. Bibcode:2012PNAS..10916811J. doi:10.1073/pnas.1210057109. PMC 3479461. PMID 23027958.
  71. ^ "Cloned bull could contribute to development of disease-resistant African cattle". ILRI news. 2016-09-05. Retrieved 2021-07-24.
  72. ^ Pal A, Chakravarty AK (22 October 2019). Genetics and breeding for disease resistance of livestock. London, United Kingdom: Academic Press. pp. 271–296. doi:10.1016/b978-0-12-816406-8.00019-x. ISBN 978-0-12-817267-4. OCLC 1125327298. PMC 7161387. S2CID 208596567. ISBN 978-0-12-816406-8 p. 276
  73. ^ "Green fluorescent protein takes Nobel prize". Lewis Brindley. Retrieved 2015-05-31.
  74. ^ Alberts B, Johnson A, Lewis J, Raff M, Roberts K, Walter P (2002). "Studying Gene Expression and Function". Molecular Biology of the Cell (4th ed.). Garland Science.
  75. ^ Randall S (2008). e Harding S, p Tombs M (eds.). "Genetically Modified Pigs for Medicine and Agriculture" (PDF). Biotechnology and Genetic Engineering Reviews. 25: 245–66. doi:10.7313/upo9781904761679.011 (inactive 12 July 2025). ISBN 978-1-904761-67-9. PMID 21412358. Archived from the original (PDF) on 26 March 2014.{{cite journal}}: CS1 maint: DOI inactive as of July 2025 (link)
  76. ^ Wongsrikeao P, Saenz D, Rinkoski T, Otoi T, Poeschla E (September 2011). "Antiviral restriction factor transgenesis in the domestic cat". Nature Methods. 8 (10): 853–9. doi:10.1038/nmeth.1703. PMC 4006694. PMID 21909101.
  77. ^ Staff (3 April 2012). "Biology of HIV". National Institute of Allergy and Infectious Diseases. Archived from the original on 11 April 2014.
  78. ^ "Scientists breed goats that produce spider silk". Lisa Zyga Phys.org. Retrieved May 31, 2010.
  79. ^ Angulo E, Cooke B (December 2002). "First synthesize new viruses then regulate their release? The case of the wild rabbit". Molecular Ecology. 11 (12): 2703–9. Bibcode:2002MolEc..11.2703A. doi:10.1046/j.1365-294X.2002.01635.x. hdl:10261/45541. PMID 12453252. S2CID 23916432.
  80. ^ Biello D. "Ancient DNA Could Return Passenger Pigeons to the Sky". Scientific American. Retrieved 2018-12-23.
  81. ^ Sarchet P. "Can we grow woolly mammoths in the lab? George Church hopes so". New Scientist. Press Association. Retrieved 2018-12-23.
  82. ^ Selkirk SM (October 2004). "Gene therapy in clinical medicine". Postgraduate Medical Journal. 80 (948): 560–70. doi:10.1136/pgmj.2003.017764. PMC 1743106. PMID 15466989.
  83. ^ Cavazzana-Calvo M, Fischer A (June 2007). "Gene therapy for severe combined immunodeficiency: are we there yet?". The Journal of Clinical Investigation. 117 (6): 1456–65. doi:10.1172/JCI30953. PMC 1878528. PMID 17549248.
  84. ^ Richards, Sabrina (6 November 2012) "Gene therapy arrives in Europe" The Scientist, Retrieved 15 April 2013
  85. ^ Rosenecker J, Huth S, Rudolph C (October 2006). "Gene therapy for cystic fibrosis lung disease: current status and future perspectives". Current Opinion in Molecular Therapeutics. 8 (5): 439–45. PMID 17078386.
  86. ^ Persons DA, Nienhuis AW (July 2003). "Gene therapy for the hemoglobin disorders". Current Hematology Reports. 2 (4): 348–55. PMID 12901333.
  87. ^ LeWitt PA, Rezai AR, Leehey MA, Ojemann SG, Flaherty AW, Eskandar EN, et al. (April 2011). "AAV2-GAD gene therapy for advanced Parkinson's disease: a double-blind, sham-surgery controlled, randomised trial". The Lancet. Neurology. 10 (4): 309–19. doi:10.1016/S1474-4422(11)70039-4. PMID 21419704. S2CID 37154043.
  88. ^ Gallaher, James "Gene therapy 'treats' Parkinson's disease" BBC News Health, 17 March 2011. Retrieved 24 April 2011
  89. ^ Urbina, Zachary (12 February 2013) "Genetically Engineered Virus Fights Liver Cancer Archived 16 February 2013 at the Wayback Machine" United Academics, Retrieved 15 February 2013
  90. ^ "Treatment for Leukemia Is Showing Early Promise". The New York Times. Associated Press. 11 August 2011. p. A15. Retrieved 21 January 2013.
  91. ^ Coghlan, Andy (26 March 2013) "Gene therapy cures leukaemia in eight days" The New Scientist, Retrieved 15 April 2013
  92. ^ Staff (13 February 2013) "Gene therapy cures diabetic dogs" New Scientist, Retrieved 15 February 2013
  93. ^ (30 April 2013) "New gene therapy trial gives hope to people with heart failure" British Heart Foundation, Retrieved 5 May 2013
  94. ^ Foster K, Foster H, Dickson JG (December 2006). "Gene therapy progress and prospects: Duchenne muscular dystrophy". Gene Therapy. 13 (24): 1677–85. doi:10.1038/sj.gt.3302877. PMID 17066097.
  95. ^ "1990 The Declaration of Inuyama". 5 August 2001. Archived from the original on 5 August 2001.
  96. ^ Smith KR, Chan S, Harris J (Oct 2012). "Human germline genetic modification: scientific and bioethical perspectives". Arch Med Res. 43 (7): 491–513. doi:10.1016/j.arcmed.2012.09.003. PMID 23072719.
  97. ^ Kolata G (23 April 2015). "Chinese Scientists Edit Genes of Human Embryos, Raising Concerns". The New York Times. Retrieved 24 April 2015.
  98. ^ Liang P, Xu Y, Zhang X, Ding C, Huang R, Zhang Z, et al. (May 2015). "CRISPR/Cas9-mediated gene editing in human tripronuclear zygotes". Protein & Cell. 6 (5): 363–372. doi:10.1007/s13238-015-0153-5. PMC 4417674. PMID 25894090.
  99. ^ Begley S (28 November 2018). "Amid uproar, Chinese scientist defends creating gene-edited babies – STAT". STAT.
  100. ^ "Half Of Fish Consumed Globally Is Now Raised On Farms, Study Finds". ScienceDaily. Retrieved 2018-12-21.
  101. ^ Tonelli FM, Lacerda SM, Tonelli FC, Costa GM, De França LR, Resende RR (2017-11-01). "Progress and biotechnological prospects in fish transgenesis". Biotechnology Advances. 35 (6): 832–844. doi:10.1016/j.biotechadv.2017.06.002. ISSN 0734-9750. PMID 28602961.
  102. ^ Nebert DW, Stuart GW, Solis WA, Carvan MJ (January 2002). "Use of reporter genes and vertebrate DNA motifs in transgenic zebrafish as sentinels for assessing aquatic pollution". Environmental Health Perspectives. 110 (1): A15. doi:10.1289/ehp.110-1240712. PMC 1240712. PMID 11813700.
  103. ^ Mattingly CJ, McLachlan JA, Toscano WA (August 2001). "Green fluorescent protein (GFP) as a marker of aryl hydrocarbon receptor (AhR) function in developing zebrafish (Danio rerio)". Environmental Health Perspectives. 109 (8): 845–9. Bibcode:2001EnvHP.109..845M. doi:10.1289/ehp.01109845. PMC 1240414. PMID 11564622.
  104. ^ Hallerman E (June 2004). "Glofish, the first GM animal commercialized: profits amid controversy". ISB News Report.
  105. ^ Hackett PB, Ekker SE, Essner JJ (2004). "Chapter 16: Applications of transposable elements in fish for transgenesis and functional genomics". In Gong Z, Korzh V (eds.). Fish Development and Genetics. World Scientific, Inc. pp. 532–80.
  106. ^ Meyers JR (2018). "Zebrafish: Development of a Vertebrate Model Organism". Current Protocols in Essential Laboratory Techniques. 16 (1): e19. doi:10.1002/cpet.19.
  107. ^ Lu JW, Ho YJ, Ciou SC, Gong Z (September 2017). "Innovative Disease Model: Zebrafish as an In Vivo Platform for Intestinal Disorder and Tumors". Biomedicines. 5 (4): 58. doi:10.3390/biomedicines5040058. PMC 5744082. PMID 28961226.
  108. ^ Barriuso J, Nagaraju R, Hurlstone A (March 2015). "Zebrafish: a new companion for translational research in oncology". Clinical Cancer Research. 21 (5): 969–75. doi:10.1158/1078-0432.CCR-14-2921. PMC 5034890. PMID 25573382.
  109. ^ Burket CT, Montgomery JE, Thummel R, Kassen SC, LaFave MC, Langenau DM, et al. (April 2008). "Generation and characterization of transgenic zebrafish lines using different ubiquitous promoters". Transgenic Research. 17 (2): 265–79. doi:10.1007/s11248-007-9152-5. PMC 3660017. PMID 17968670.
  110. ^ Du SJ, Gong Z, Fletcher GL, Shears MA, King MJ, Idler DR, et al. (1992). "Growth Enhancement in Transgenic Atlantic Salmon by the Use of an 'All Fish' Chimeric Growth Hormone Gene Construct". Nature Biotechnology. 10 (2): 176–81. doi:10.1038/nbt0292-176. PMID 1368229. S2CID 27048646.
  111. ^ Devlin RH, Biagi CA, Yesaki TY, Smailus DE, Byatt JC (February 2001). "Growth of domesticated transgenic fish". Nature. 409 (6822): 781–2. Bibcode:2001Natur.409..781D. doi:10.1038/35057314. PMID 11236982. S2CID 5293883.
  112. ^ Rahman MA, et al. (2001). "Growth and nutritional trials on transgenic Nile tilapia containing an exogenous fish growth hormone gene". Journal of Fish Biology. 59 (1): 62–78. Bibcode:2001JFBio..59...62R. doi:10.1111/j.1095-8649.2001.tb02338.x.
  113. ^ Pollack A (21 December 2012). "Engineered Fish Moves a Step Closer to Approval". The New York Times.
  114. ^ a b c d "FDA: Genetically engineered fish would not harm nature". USA Today. 2012. Retrieved November 28, 2015.
  115. ^ a b Firger, J. (2014). "Controversy swims around genetically modified fish". CBS News. Retrieved November 28, 2015.
  116. ^ Environmental Assessment for AquAdvantage Salmon
  117. ^ a b Steenhuysen, J., Polansek, T. (November 19, 2015). "U.S. clears genetically modified salmon for human consumption". Reuters. Retrieved November 20, 2015.
  118. ^ "AquAdvantage Salmon". FDA. Retrieved 20 July 2018.
  119. ^ "FDA Has Determined That the AquAdvantage Salmon is as Safe to Eat as Non-GE Salmon". U.S. Food & Drug Administration. 19 November 2015. Archived from the original on November 19, 2015. Retrieved 9 February 2018.
  120. ^ Connor S. (2012). "Ready to eat: the first GM fish for the dinner table". The Independent. Retrieved November 28, 2015.
  121. ^ "Online Education Kit: 1981–82: First Transgenic Mice and Fruit Flies". genome.gov.
  122. ^ Weasner BM, Zhu J, Kumar JP (2017). "FLPing Genes on and off in Drosophila". Site-Specific Recombinases. Methods in Molecular Biology. Vol. 1642. pp. 195–209. doi:10.1007/978-1-4939-7169-5_13. ISBN 978-1-4939-7167-1. PMC 5858584. PMID 28815502.
  123. ^ Jennings BH (2011-05-01). "Drosophila – a versatile model in biology & medicine". Materials Today. 14 (5): 190–195. doi:10.1016/S1369-7021(11)70113-4.
  124. ^ Ren X, Holsteens K, Li H, Sun J, Zhang Y, Liu LP, et al. (May 2017). "Genome editing in Drosophila melanogaster: from basic genome engineering to the multipurpose CRISPR-Cas9 system". Science China Life Sciences. 60 (5): 476–489. doi:10.1007/s11427-017-9029-9. PMID 28527116. S2CID 4341967.
  125. ^ Gallagher, James "GM mosquitoes offer malaria hope" BBC News, Health, 20 April 2011. Retrieved 22 April 2011
  126. ^ Corby-Harris V, Drexler A, Watkins de Jong L, Antonova Y, Pakpour N, Ziegler R, et al. (July 2010). Vernick KD (ed.). "Activation of Akt signaling reduces the prevalence and intensity of malaria parasite infection and lifespan in Anopheles stephensi mosquitoes". PLOS Pathogens. 6 (7): e1001003. doi:10.1371/journal.ppat.1001003. PMC 2904800. PMID 20664791.
  127. ^ Windbichler N, Menichelli M, Papathanos PA, Thyme SB, Li H, Ulge UY, et al. (May 2011). "A synthetic homing endonuclease-based gene drive system in the human malaria mosquito". Nature. 473 (7346): 212–5. Bibcode:2011Natur.473..212W. doi:10.1038/nature09937. PMC 3093433. PMID 21508956.
  128. ^ Wise de Valdez MR, Nimmo D, Betz J, Gong HF, James AA, Alphey L, et al. (March 2011). "Genetic elimination of dengue vector mosquitoes". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (12): 4772–5. Bibcode:2011PNAS..108.4772W. doi:10.1073/pnas.1019295108. PMC 3064365. PMID 21383140.
  129. ^ a b Knapton S (6 February 2016). "Releasing millions of GM mosquitoes 'could solve zika crisis'". The Telegraph. Retrieved 14 March 2016.
  130. ^ Harris AF, Nimmo D, McKemey AR, Kelly N, Scaife S, Donnelly CA, et al. (October 2011). "Field performance of engineered male mosquitoes". Nature Biotechnology. 29 (11): 1034–7. doi:10.1038/nbt.2019. PMID 22037376. S2CID 30862975.
  131. ^ Staff (March 2011) "Cayman demonstrates RIDL potential" Oxitec Newsletter, March 2011. Retrieved 20 September 2011
  132. ^ Benedict MQ, Robinson AS (August 2003). "The first releases of transgenic mosquitoes: an argument for the sterile insect technique". Trends in Parasitology. 19 (8): 349–55. doi:10.1016/s1471-4922(03)00144-2. PMID 12901936.
  133. ^ a b Zhang S (2017-09-08). "Genetically Modified Moths Come to New York". The Atlantic. Retrieved 2018-12-23.
  134. ^ Scharping N (2017-05-10). "After Mosquitos, Moths Are the Next Target For Genetic Engineering". Discover Magazine. Archived from the original on 2019-11-11. Retrieved 2018-12-23.
  135. ^ Reeves R, Phillipson M (January 2017). "Mass Releases of Genetically Modified Insects in Area-Wide Pest Control Programs and Their Impact on Organic Farmers". Sustainability. 9 (1): 59. Bibcode:2017Sust....9...59R. doi:10.3390/su9010059.
  136. ^ Simmons GS, McKemey AR, Morrison NI, O'Connell S, Tabashnik BE, Claus J, et al. (2011-09-13). "Field performance of a genetically engineered strain of pink bollworm". PLOS ONE. 6 (9): e24110. Bibcode:2011PLoSO...624110S. doi:10.1371/journal.pone.0024110. PMC 3172240. PMID 21931649.
  137. ^ Xu H, O'Brochta DA (July 2015). "Advanced technologies for genetically manipulating the silkworm Bombyx mori, a model Lepidopteran insect". Proceedings. Biological Sciences. 282 (1810): 20150487. doi:10.1098/rspb.2015.0487. PMC 4590473. PMID 26108630.
  138. ^ Tomita M (April 2011). "Transgenic silkworms that weave recombinant proteins into silk cocoons". Biotechnology Letters. 33 (4): 645–54. doi:10.1007/s10529-010-0498-z. PMID 21184136. S2CID 25310446.
  139. ^ Xu J, Dong Q, Yu Y, Niu B, Ji D, Li M, et al. (August 2018). "Bombyx mori". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (35): 8757–8762. doi:10.1073/pnas.1806805115. PMC 6126722. PMID 30082397.
  140. ^ Le Page M. "GM worms make a super-silk completely unknown in nature". New Scientist. Retrieved 2018-12-23.
  141. ^ Scott, B.B., Lois, C. (2005). "Generation of tissue-specific transgenic birds with lentiviral vectors". Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 102 (45): 16443–16447. Bibcode:2005PNAS..10216443S. doi:10.1073/pnas.0508437102. PMC 1275601. PMID 16260725.
  142. ^ "Poultry scientists develop transgenic chicken to aid study of embryo development". projects.ncsu.edu. Retrieved 2018-12-23.
  143. ^ "Genetically modified chickens that don't transmit bird flu developed; Breakthrough could prevent future bird flu epidemics". ScienceDaily. Retrieved 2018-12-23.
  144. ^ a b Botelho JF, Smith-Paredes D, Soto-Acuña S, O'Connor J, Palma V, Vargas AO (March 2016). "Molecular development of fibular reduction in birds and its evolution from dinosaurs". Evolution; International Journal of Organic Evolution. 70 (3): 543–54. doi:10.1111/evo.12882. PMC 5069580. PMID 26888088.
  145. ^ Becker R (2015). "US government approves transgenic chicken". Nature News. doi:10.1038/nature.2015.18985. S2CID 181399746.
  146. ^ "GM chickens that don't transmit bird flu". The University of Edinburgh. Retrieved September 3, 2015.
  147. ^ Landers J (November 10, 2014). "Paleontologist Jack Horner is hard at work trying to turn a chicken into a dinosaur". The Washington Times. Retrieved January 19, 2015.
  148. ^ Horner JR, Gorman J (2009). How to build a dinosaur: extinction doesn't have to be forever. New York: Dutton. ISBN 978-0-525-95104-9. OCLC 233549535.
  149. ^ Reverse Engineering Birds' Beaks Into Dinosaur Bones by Carl Zimmer, NY Times, May 12, 2015
  150. ^ Francisco Botelho J, Smith-Paredes D, Soto-Acuña S, Mpodozis J, Palma V, Vargas AO (May 2015). "Skeletal plasticity in response to embryonic muscular activity underlies the development and evolution of the perching digit of birds". Scientific Reports. 5 9840. Bibcode:2015NatSR...5.9840F. doi:10.1038/srep09840. PMC 4431314. PMID 25974685.
  151. ^ "The Chickenosaurus Project Hatches An Update". Dinosaur Culture. 2023-05-21. Retrieved 2025-06-06.
  152. ^ "Glowing biomarker could simplify in ovo chick sexing". WATTPoultry.com. 2023-02-20. Retrieved 2023-06-29.
  153. ^ "Israeli startup breeds hens which lay eggs of female-only chicks". ctech. 2022-12-13. Retrieved 2023-06-29.
  154. ^ "In-Ovo Sexing Overview". Innovate Animal Ag. Retrieved 2023-06-29.
  155. ^ Chesneau, A., Sachs, L. M., Chai, N., Chen, Y., Du Pasquier, L., Loeber, J., et al. (2008). "Transgenesis procedures in Xenopus". Biology of the Cell. 100 (9): 503–529. doi:10.1042/BC20070148. ISSN 1768-322X. PMC 2967756. PMID 18699776.
  156. ^ a b c Sobkow, L., Epperlein, H.-H., Herklotz, S., Straube, W. L., Tanaka, E. M. (February 2006). "A germline GFP transgenic axolotl and its use to track cell fate: Dual origin of the fin mesenchyme during development and the fate of blood cells during regeneration". Developmental Biology. 290 (2): 386–397. doi:10.1016/j.ydbio.2005.11.037. ISSN 0012-1606. PMID 16387293.
  157. ^ a b c Echeverri, K., Fei, J., Tanaka, E. M. (2022). "The Axolotl's journey to the modern molecular era". Emerging Model Systems in Developmental Biology. Current Topics in Developmental Biology. Vol. 147. Elsevier. pp. 631–658. doi:10.1016/bs.ctdb.2021.12.010. ISBN 978-0-12-820154-1. PMC 10029325. PMID 35337465.
  158. ^ Fini JB, Le Mevel S, Turque N, Palmier K, Zalko D, Cravedi JP, et al. (August 2007). "An in vivo multiwell-based fluorescent screen for monitoring vertebrate thyroid hormone disruption". Environmental Science & Technology. 41 (16): 5908–14. Bibcode:2007EnST...41.5908F. doi:10.1021/es0704129. PMID 17874805.
  159. ^ "Removing Threat from Invasive Species with Genetic Engineering?". Science in the News. 2014-07-28. Retrieved 2018-12-23.
  160. ^ "Cane toads to get the Crispr treatment". Radio National. 2017-11-17. Retrieved 2018-12-23.
  161. ^ a b Horb, M., Wlizla, M., Abu-Daya, A., McNamara, S., Gajdasik, D., Igawa, T., et al. (2019). "Xenopus Resources: Transgenic, Inbred and Mutant Animals, Training Opportunities, and Web-Based Support". Frontiers in Physiology. 10: 387. doi:10.3389/fphys.2019.00387. ISSN 1664-042X. PMC 6497014. PMID 31073289.
  162. ^ Suzuki, N., Ochi, H. (2020). "Regeneration enhancers: A clue to reactivation of developmental genes". Development, Growth & Differentiation. 62 (5): 343–354. doi:10.1111/dgd.12654. ISSN 1440-169X. PMC 7383998. PMID 32096563.
  163. ^ Gesslbauer, B., Radtke, C. (November 2018). "The Regenerative Capability of the Urodele Amphibians and Its Potential for Plastic Surgery". Annals of Plastic Surgery. 81 (5): 511–515. doi:10.1097/SAP.0000000000001619. ISSN 1536-3708. PMID 30247194. S2CID 52350332.
  164. ^ a b Pollet N, Mazabraud A (2006). "Insights from Xenopus Genomes". In Volff JN (ed.). Vertebrate genomes. Genome Dynamics (in German). Vol. 2. Basel, Switzerland: Karger. pp. 138–153. doi:10.1159/000095101. ISBN 978-3-8055-8151-6. OCLC 69391396. PMID 18753776.
  165. ^ Beck, C. W., Slack, J. M. (19 September 2001). "An amphibian with ambition: a new role for Xenopus in the 21st century". Genome Biology. 2 (10): reviews1029.1. doi:10.1186/gb-2001-2-10-reviews1029. ISSN 1474-760X. PMC 138973. PMID 11597339.
  166. ^ a b c d e Tilley, L., Papadopoulos, S., Pende, M., Fei, J., Murawala, P. (13 May 2021). "The use of transgenics in the laboratory axolotl". Developmental Dynamics. 251 (6): 942–956. doi:10.1002/dvdy.357. eISSN 1097-0177. ISSN 1058-8388. PMC 8568732. PMID 33949035.
  167. ^ Steinhoff, G., ed. (2016). Regenerative Medicine - from Protocol to Patient. Springer International Publishing. doi:10.1007/978-3-319-27583-3. ISBN 978-3-319-27581-9. S2CID 27313520.
  168. ^ Woodcock, M. R., Vaughn-Wolfe, J., Elias, A., Kump, D. K., Kendall, K. D., Timoshevskaya, N., et al. (31 January 2017). "Identification of Mutant Genes and Introgressed Tiger Salamander DNA in the Laboratory Axolotl, Ambystoma mexicanum". Scientific Reports. 7 (1) 6. Nature Publishing Group. Bibcode:2017NatSR...7....6W. doi:10.1038/s41598-017-00059-1. ISSN 2045-2322. PMC 5428337. PMID 28127056.
  169. ^ Echeverri, K., Clarke, J. D. W., Tanaka, E. M. (August 2001). "In Vivo Imaging Indicates Muscle Fiber Dedifferentiation Is a Major Contributor to the Regenerating Tail Blastema". Developmental Biology. 236 (1): 151–164. doi:10.1006/dbio.2001.0312. ISSN 0012-1606. PMID 11456451.
  170. ^ Nowoshilow, S., Tanaka, E. M. (September 2020). "Introducing www.axolotl-omics.org – an integrated -omics data portal for the axolotl research community". Experimental Cell Research. 394 (1) 112143. doi:10.1016/j.yexcr.2020.112143. ISSN 0014-4827. PMID 32540400. S2CID 219704317.
  171. ^ Schloissnig, S., Kawaguchi, A., Nowoshilow, S., Falcon, F., Otsuki, L., Tardivo, P., et al. (13 April 2021). "The giant axolotl genome uncovers the evolution, scaling, and transcriptional control of complex gene loci". Proceedings of the National Academy of Sciences. 118 (15): e2017176118. Bibcode:2021PNAS..11817176S. doi:10.1073/pnas.2017176118. ISSN 1091-6490. PMC 8053990. PMID 33827918.
  172. ^ "History of research on C. elegans and other free-living nematodes as model organisms". www.wormbook.org. Retrieved 2018-12-24.
  173. ^ Hopkin M (2006-10-02). "RNAi scoops medical Nobel". News@nature. doi:10.1038/news061002-2. ISSN 1744-7933. S2CID 85168270.
  174. ^ Conte D, MacNeil LT, Walhout AJ, Mello CC (January 2015). "RNA Interference in Caenorhabditis elegans". Current Protocols in Molecular Biology. 109: 26.3.1–26.3.30. doi:10.1002/0471142727.mb2603s109. ISBN 978-0-471-14272-0. PMC 5396541. PMID 25559107.
  175. ^ a b Praitis V, Maduro MF (2011). "Transgenesis in C. elegans". Caenorhabditis elegans: Molecular Genetics and Development. Methods in Cell Biology. Vol. 106. pp. 161–85. doi:10.1016/B978-0-12-544172-8.00006-2. ISBN 978-0-12-544172-8. PMID 22118277.
  176. ^ Diogo J, Bratanich A (November 2014). "The nematode Caenorhabditis elegans as a model to study viruses". Archives of Virology. 159 (11): 2843–51. doi:10.1007/s00705-014-2168-2. PMID 25000902. S2CID 18865352.
  177. ^ Tejeda-Benitez L, Olivero-Verbel J (2016). "Caenorhabditis elegans, a Biological Model for Research in Toxicology". Reviews of Environmental Contamination and Toxicology Volume 237. Vol. 237. pp. 1–35. doi:10.1007/978-3-319-23573-8_1. ISBN 978-3-319-23572-1. PMID 26613986.
  178. ^ Schmidt J, Schmidt T (2018). "Animal Models of Machado-Joseph Disease". Polyglutamine Disorders. Advances in Experimental Medicine and Biology. Vol. 1049. pp. 289–308. doi:10.1007/978-3-319-71779-1_15. ISBN 978-3-319-71778-4. PMID 29427110.
  179. ^ Griffin EF, Caldwell KA, Caldwell GA (December 2017). "Genetic and Pharmacological Discovery for Alzheimer's Disease Using Caenorhabditis elegans". ACS Chemical Neuroscience. 8 (12): 2596–2606. doi:10.1021/acschemneuro.7b00361. PMID 29022701.
  180. ^ Daniells C, Mutwakil MH, Power RS, David HE, De Pomerai DI (2002). "Transgenic Nematodes as Biosensors of Environmental Stress". Biotechnology for the Environment: Strategy and Fundamentals. Focus on Biotechnology. Vol. 3A. Springer, Dordrecht. pp. 221–236. doi:10.1007/978-94-010-0357-5_15. ISBN 978-94-010-3907-9.
  181. ^ "More valuable than gold, but not for long: genetically-modified sea cucumbers headed to China's dinner tables". South China Morning Post. 2015-08-05. Retrieved 2018-12-23.
  182. ^ Zeng A, Li H, Guo L, Gao X, McKinney S, Wang Y, et al. (June 2018). "+ Neoblasts Are Adult Pluripotent Stem Cells Underlying Planaria Regeneration". Cell. 173 (7): 1593–1608.e20. doi:10.1016/j.cell.2018.05.006. PMC 9359418. PMID 29906446. S2CID 49238332.
  183. ^ "One special cell can revive a flatworm on the brink of death". Nature. 558 (7710): 346–347. 14 June 2018. Bibcode:2018Natur.558S.346.. doi:10.1038/d41586-018-05440-2. S2CID 49296244.
  184. ^ Wudarski J, Simanov D, Ustyantsev K, de Mulder K, Grelling M, Grudniewska M, et al. (December 2017). "Efficient transgenesis and annotated genome sequence of the regenerative flatworm model Macrostomum lignano". Nature Communications. 8 (1) 2120. Bibcode:2017NatCo...8.2120W. doi:10.1038/s41467-017-02214-8. PMC 5730564. PMID 29242515.
  185. ^ Zantke J, Bannister S, Rajan VB, Raible F, Tessmar-Raible K (May 2014). "Genetic and genomic tools for the marine annelid Platynereis dumerilii". Genetics. 197 (1): 19–31. doi:10.1534/genetics.112.148254. PMC 4012478. PMID 24807110.
  186. ^ Wittlieb J, Khalturin K, Lohmann JU, Anton-Erxleben F, Bosch TC (April 2006). "Transgenic Hydra allow in vivo tracking of individual stem cells during morphogenesis". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (16): 6208–11. Bibcode:2006PNAS..103.6208W. doi:10.1073/pnas.0510163103. PMC 1458856. PMID 16556723.
  187. ^ Perry KJ, Henry JQ (February 2015). "CRISPR/Cas9-mediated genome modification in the mollusc, Crepidula fornicata". Genesis. 53 (2): 237–44. doi:10.1002/dvg.22843. PMID 25529990. S2CID 36057310.
  188. ^ Nomura T, Yamashita W, Gotoh H, Ono K (2015-02-24). "Genetic manipulation of reptilian embryos: toward an understanding of cortical development and evolution". Frontiers in Neuroscience. 9: 45. doi:10.3389/fnins.2015.00045. PMC 4338674. PMID 25759636.
  189. ^ Rasmussen RS, Morrissey MT (2007). "Biotechnology in Aquaculture: Transgenics and Polyploidy". Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety. 6 (1): 2–16. doi:10.1111/j.1541-4337.2007.00013.x.
  190. ^ Ebert MS, Sharp PA (November 2010). "MicroRNA sponges: progress and possibilities". RNA. 16 (11): 2043–50. doi:10.1261/rna.2414110. PMC 2957044. PMID 20855538.
  191. ^ Frewer L, Kleter G, Brennan M, Coles D, Fischer A, Houdebine L, et al. (June 2013). "Genetically modified animals from life-science, socio-economic and ethical perspectives: examining issues in an EU policy context". New Biotechnology. 30 (5): 447–460. doi:10.1016/j.nbt.2013.03.010. PMID 23567982.
  192. ^ Eriksson S, Jonas E, Rydhmer L, Röcklinsberg H (January 2018). "Invited review: Breeding and ethical perspectives on genetically modified and genome edited cattle". Journal of Dairy Science. 101 (1): 1–17. doi:10.3168/jds.2017-12962. PMID 29102147.
  193. ^ Kiani AK, Pheby D, Henehan G, Brown R, Sieving P, Sykora P, et al. (2022-10-17). "Ethical considerations regarding animal experimentation". Journal of Preventive Medicine and Hygiene. 63 (2S3): E255 – E266. doi:10.15167/2421-4248/JPMH2022.63.2S3.2768. PMC 9710398. PMID 36479489.
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